Жировая ткань глазницы: амортизационная подушка, или Terra incognita в офтальмологии

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Представление о роли жировой ткани в организме человека за последние десятилетия претерпело значительные изменения. Знание о ее участии в эндокринных и иммунных процессах открыло новые стороны патогенеза и терапии различных заболеваний, перспективные возможности регенеративной медицины. Дальнейшим направлением исследований становится более детальное изучение строения и функций отдельных жировых скоплений. Наибольший интерес в этом аспекте представляет жировая ткань глазницы, отличающаяся своим нейроэктодермальным происхождением. В данной обзорной статье приведены данные об анатомии, структуре, клеточном и биохимическом составе орбитального жира. Уделено внимание отдельным типам клеток: адипоцитам и мезенхимальным стволовым клеткам. Обобщены данные о таких характеристиках стволовых клеток орбитальной клетчатки, как поверхностные CD-маркеры и способность к дифференцировке. Данные об особенностях жировой клетчатки глазницы в зависимости от состояния органа зрения и его вспомогательного аппарата позволяют предположить ее участие в формировании разнообразной глазной патологии. В статье перечислены возможные направления дальнейшего изучения и практического использования орбитального жира и входящих в его состав клеток в офтальмологии, реконструктивно-пластической хирургии и регенеративной медицине

Об авторах

Сергей Анатольевич Борзенок

МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Фёдорова;
Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова

Автор, ответственный за переписку.
Email: borzenok@mntk.ru

доктор медицинских наук, академик РАЕН, заведующий Центром фундаментальных и прикладных медико-биологических проблем, 127486, Москва, Бескудниковский б-р, д. 59A;

профессор кафедры глазных болезней

Россия

Дарья Сергеевна Афанасьева

МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Фёдорова

Email: ada-tomsk@yandex.ru

клинический ординатор,

127486, Москва, Бескудниковский б-р, д. 59A

Россия

Марина Борисовна Гущина

МНТК «Микрохирургия глаза» им. акад. С.Н. Фёдорова

Email: mbg1411@yandex.ru

кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник,

127486, Москва, Бескудниковский б-р, д. 59A

Россия

Список литературы

  1. Tran T.T., Kahn C.R. Transplantation of adipose tissue and adipose-derived stem cells as a tool to study metabolic physiology and for treatment of disease. Nat. Rev. Endocrinol. 2010; 6: 195–213.
  2. Shwarz V. Adipose tissue as an organ of the immune system. Tsitokiny i vospalenie = Cytokines & inflammation. 2009;4. Available at: http://www.cytokines.ru/2009/4/Art1.php. (accessed:10.04.2015).
  3. Planat-Benard V., Silvestre J.S., Cousin B., André M., Nibbelink M., Tamarat R. Plasticity of human adipose lineage cells toward endothelial cells — Physiological and therapeutic perspectives. Circulation. 2004; 109 (5): 656–663.
  4. Schäffler A., Müller-Ladner U., Schölmerich J., Büchler C. Role of adipose tissue as an inflammatory organ in human diseases. Endocr. Rev. 2006; 27 (5): 449–467.
  5. Osikhov I.A., Bespalova I.D., Bychkov V.A., Ryazantseva N.V., Kalyuzhin V.V., Afanas'eva D.S. Violations of cell-cell interactions in the pathogenesis of adipose tissue inflammation in the metabolic syndrome. Byulleten' Sibirskogo otdeleniya Rossiiskoi akademii meditsinskikh nauk = Bulletin of the Siberian Branch of the Russian Academy of Medical Sciences. 2013;34(4):51–58.
  6. Salgado A.J., Reis R.L., Sousa N., Gimble J.M. Adipose tissue derived stem cells secretome: soluble factors and their roles in regenerative medicine. Curr. Stem Cell Res. Ther. 2010; 5: 103–110.
  7. Vit V. Stroenie zritel'noi sistemy cheloveka [Structure of Human Visual System]. Odessa, Astroprint, 2010. 587 p.
  8. Johnston M.C., Noden D.M., Hazelton R.D., Coulombre J.L., Coulombre A.J. Origins of avian ocular and periocular tissues. Exp. Eye Res. 1979; 29: 27–43.
  9. Sorozhkina E.S., Sirmais O.S. Role of immunological factors in the pathogenesis of endocrine ophthalmopathy. Rossiiskii oftal'mologicheskii zhurnal = Russian ophthalmological journal. 2013;3:106–112.
  10. Shilkin G.A., Gemonov V.V., Andreitsev A.N., Ivanova Z.G., Kalinnikov Yu.Yu., Shilkin A.G. Embriogenez i funktsii retrobul'barnoi kletchatki i ee svyaz' s klinicheskoi oftal'mologiei. Aktual'nye voprosy detskoi oftal'mologii [Embryogenesis and Retrobulbar Tissue Function and its Relationship with Clinical Ophthalmology. Actual Problems of Pediatric Ophthalmology]. Moscow, 1990. P. 154–160.
  11. Shilkin G.A., Chabrov A.E., Davydov D.V., Naumenko N.A., Ivanova Z.G., Andreitsev A.N. Morfologicheskie osobennosti retrobul'barnoi kletchatki u cheloveka v rannem vozrastnom periode. Aktual'nye voprosy detskoi oftal'mologii [Morphological Features of Retrobulbar Fat in Humans at an Early Age Period. Actual Problems of Pediatric Ophthalmology].Moscow, 1990. P. 161–165.
  12. Shilkin G.A., Mikhailova G.D., Klimov N.I., Kharizov A.A. Ul'trazvukovaya kharakteristika retrobul'barnoi kletchatki. Lazernye metody lecheniya i angiograficheskie issledovaniya v oftal'mologii [Ultrasonic Characterization of Retrobulbar Fat. Laser Treatments and Angiographic Studies in Ophthalmology]. Moscow, 1983. P. 266–271.
  13. Turney T.A., Golden B.A. Orbital anatomy for the surgeon. Oral Maxillofacial. Surg. Clin. North Am. 2012; 24: 525–536.
  14. Ahmadi A.J. Saari J.C. Decreased carotenoid content in preaponeurotic orbital fat of patients with involutional ptosis. Ophthal. Plast. Reconstr. Surg. 2005; 21 (1): 46–51.
  15. Meier S. The distribution of cranial neural crest cells during ocular morpho-genesis. Prog. Clin. Biol. Res. 1982; 82: 1–15.
  16. Bremond-Gignac D., Copin H. Anatomical histological and mesoscopic study of the adipose tissue of the orbit. Surg. Radiol. Anat. 2004; 26 (4): 297–302.
  17. Gesta S., Tseng Y.H., Kahn C.R. Developmental origin of fat: tracking obesity to its source. Cell. 2007; 131 (2): 242–256.
  18. Stojanov O., Stokić E., Sveljo O., Naumović N. The influence of retrobulbar adipose tissue volume upon intraocular pressure in obesity. Vojnosanit Pregl. 2013; 70 (5): 469–476.
  19. Wiersinga W.M., Kahaly G. Graves’ orbitopathy: a multidisciplinary approach: questions and answers. Karger Medical and Scientific Publishers. 2007. 260 р.
  20. Onyimba C., Bujalska I., Durrani O., Abbott J., Khosla P., Moosavi A. Glucocorticoid metabolic pathways in human orbital adipose tissue: a comparison with subcutaneous and omental depots. Endocrine. Abstracts. 2007; 13: 115.
  21. Ilankovan V., Soames J.V. Morphometric analysis of orbital, buccal and subcutaneous fats: their potential in the treatment of enophthalmos. Brit. J. Oral Maxillofac Surg. 1995; 33(1): 40–42.
  22. Sires B.S., Lemke B.N., Dortzbach R.K., Gonnering R.S. Characterization of human orbital fat and connective tissue. Ophthal Plast Reconstr. Surg. 1998; 14 (6): 403–414.
  23. Korn B.S., Kikkawa D.O., Hicok K.C. Identification and characterization of adult stem cells. Ophthal. Plast. Reconstr. Surg. 2009; 25 (1): 27–32.
  24. Chen S.Y., Mahabole M., Horesh E., Wester S., Goldberg J.L., Tseng S.C. Isolation and characterization of mesenchymal progenitor cells from human orbital adipose tissue. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2014; 55 (8): 4842–4852.
  25. Ho I.H., Ma W.H., Tseng T.C., Chen Y.F., Chen M.H., Lee O.K. Isolation and characterization of milti-potent stem cells from human orbital fat tissues. Tissue Eng. Part A. 2011; 1–2: 255–266.
  26. Park J., Cho H.K., Moon J.I. Changes to upper eyelid orbital fat from use of topical bimatoprost, travoprost, and latanoprost. Jpn. J. Ophthalmol. 2011; 55 (1): 22–27.
  27. Ahmadi A.J., Saari J.C., Mozaffarian D., Garwin G.G., Tarbet K.J., Orcutt J.C. Decreased carotenoid content in preaponeurotic orbital fat of patients with involutional ptosis. Ophthal. Plast. Reconstr. Surg. 2005; 21 (1): 46–51.
  28. Wester S.T. Orbital stem cells. Curr. Ophthalmol. Rep. 2014; 2: 107–115.
  29. Lin K.J., Loi M.X., Lien G.S., Cheng C.F., Pao H.Y., Chang Y.Ch. Topical administration of orbital fat-derived stem cells promotes corneal tissue regeneration. Stem Cell Res. Ther. 2013; 4 (3): 72.
  30. Chien M.H., Bien M.Y., Ku C.C., Chang Y.C., Pao H.Y., Yang Y.L. Systemic human orbital fat-derived stem/stromal cell transplantation ameliorates acute inflammation in lipopolysaccharide-induced acute lung injury. Crit. Care Med. 2012; 40 (4): 1245–1253.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Издательство "Педиатръ", 2015



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах