BLOOD COAGULATION AND FIBRINOLYSIS DISTURBANCES IN ACUTE INFLAMMATORY RESPONSE IN PATIENTS WITH SEPTIC TUBOОVARIAL FORMATIONS

Cover Page

Abstract


Objective: There are no any systemized studies of relationship between the coagulative haemostasis’ disorders and metabolic and cytokine status in patients with septic tuboovarial formations. The aim of the present work was to study the mechanisms of blood coagulation disorders and their relationships with changes of cytokine status and acute phase of inflammatory response in septic tubovarial formations in women. Methods: 32 patients with purulent tubovarial formations and 30 healthy women were examined. Results: Shortening of activated partial thromboplastin, prothrombin and thrombin clotting time, increasing the duration of XIIa-kallikrein-dependent fibrinolysis, as well as the elevation of paracoagulation products in blood plasma were observed. IL-1β (p =0.000023), TNF-α (р <0.001), C-reactive protein (р <0.001), haptoglobin (р <0.001) and fibrinogen (р <0.001) levels were higher in peripheral blood of patients in comparison with healthy women. Accumulation of lipid hydroperoxides (р <0.001) and malonic dialdehyde (р <0.001) occurred in the blood plasma of patients. Serum albumin (р <0.001) and transferring (р <0.001) levels were lesser in patients with purulent tuboovarial formations in comparison with healthy women. Conclusion: The obtained results showing an initiating role of cytokine and oxidative metabolic status changes in blood coagulation potential’s and fibrinolysis activity’s disorders developing. This biochemical signs may be used as objective criteria which may serve to determine the risk of thrombosis in case of acute inflammatory response in women with purulent tubovarial inflammation.

 


G. A. Afanas'eva

V.I. Razumovskiy Saratov State Medical University, Russian Federation

Author for correspondence.
Email: gafanaseva@yandex.ru

Russian Federation доктор медицинских наук, доцент, заведующая кафедрой патологической физио- логии им. акад. А.А. Богомольца Саратовского государственного медицинского университета им. В.И. Разумовского Адрес: 410012, Саратов, ул. Большая Казачья, д. 112, тел.: +7 (8452) 66-97-68

A. N. Simonova

V.I. Razumovskiy Saratov State Medical University, Russian Federation

Email: antonina090780@mail.ru

Russian Federation заочный аспирант кафедры патологической физиологии им. акад. А.А. Бого- мольца Саратовского государственного медицинского университета им. В.И. Разумовского, врач акушер-гинеколог Областной клинической больницы г. Саратова Адрес: 410012, Саратов, ул. Большая Казачья, д. 112, тел.: +7 (8452) 66-97-68

  1. Зайчик А.Ш., Чурилов Л.П. Общая патофизиология (с основами иммунопатологии). СПб.: ЭЛБИ-СПб. 2008. 656 с.
  2. Кузник Б.И., Цыбиков Н.Н., Витковский Ю.А. Тромбоз, гемостаз и реология. 2005; 2: 3–16.
  3. Semeraro N., Colucci M. Inflammation and thrombosis. In: Thrombosis: Fundamental and Clinical Aspects. J. Arnout, G. de Gaetano, M. Hoylaerts, K. Peerlinck, С. van Geet, R. Verhaeghe (eds.). Leuven (Belgium): University Press. 2003. 342 p.
  4. Кузник Б.И. Клеточные и молекулярные механизмы регуляции системы гемостаза в норме и патологии. Чита: Экспресс-Издательство. 2010. 828 с.
  5. Кузник Б.И. Физиология и патология системы крови. М.: Вузовская книга. 2004. 286 с.
  6. Макацария А.Д., Бицадзе В.О. Тромбофилические состояния в акушерской практике. М. 2001. 704 с.
  7. Strukova S. Effect of activated protein C on secretory activity of rat peritoneal mast cells. Frontiers in Bioscience. 2006; 11: 59–80.
  8. Баркаган З.С., Момот А.П. Диагностика и контролирующая терапия нарушений гемостаза. М.: Ньюдиамед. 2008. 292 с.
  9. Кондранина Т.Г., Горин В.С., Григорьев Е.В., Степанов В.В., Молоткова Е.Д. Белки острой фазы воспаления и маркеры эндотоксинемии, их прогностическая значимость в гинекологической практике. Российский Вестник акушера-гинеколога. 2009; 3: 26–30.
  10. Кизилова Н.С. Клинико-лабораторная диагностика системы гемостаза, принципы и схемы исследования. Новосибирск. 2007. 216 с.
  11. Карпищенко А.И. Медицинские лабораторные технологии. Справочник. СПб.: Интермедика. 2002. 600 с.
  12. Реброва О.Ю. Статистический анализ медицинских данных. Применение пакета прикладных программ STATISTICA. М.: Медиасфера. 2003. 312 с.
  13. Reber G., de Moerloose P. Standardization of D-dimer testing. In: Quality in laboratory hemostasis and thrombosis. Wiley-Blackwell Publishing, Sheffield, UK. 2009. P. 99–109.
  14. Cao W.J., Niiya M., Zheng, X.W., Shang D.Z., Zheng X.L. Inflammatory cytokines inhibit ADAMTS13 synthesis in hepatic stellate cells and endothelial cells. J. Thromb. Haemost. 2008; 6 (7): 1233–1255, 1538–7933.
  15. Bernando A., Ball C., Nolasco L., Moake J.F., Dong J.F. Effects of inflammatory cytokines on the release and cleavage of theendothelial cell-derived ultralarge von Willebrand factor multimers under flow. Blood. 2004; 104: 100–106.

Views

Abstract - 12

PDF (Russian) - 1

Cited-By


PlumX



Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 International License.