Генетические аспекты развития идиопатической фибрилляции предсердий у больных без структурных сердечных аномалий

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Обоснование. Фибрилляция предсердий — наиболее часто встречающаяся аритмия. Примерно в 10–20% случаев данное нарушение ритма сердца возникает у больных без сопутствующей кардиальной и экстракардиальной патологии. В этих случаях применяется термин «изолированная» или «идиопатическая фибрилляция предсердий». В значительной части случаев развития идиопатической фибрилляции предсердий предполагается роль генетических факторов. Наибольший интерес для изучения представляют случаи несемейной формы аритмии, обусловленные полиморфизмом генов, ответственных за кардиогенез и регулирующих активность других генов.

Цель исследования — определение роли ряда однонуклеотидных полиморфизмов в развитии идиопатической фибрилляции предсердий.

Методы. Обследованы 174 пациента с фибрилляцией предсердий и группа контроля в количестве 124 человек без сердечно-сосудистой патологии. Пациенты были разделены на две подгруппы — с изолированной формой фибрилляции предсердий (n=94) и с сопутствующей артериальной гипертензией (n=80). Всем пациентам проводился комплекс клинико-инструментальных (электро-, эхокардиография; компьютерная томография легочных вен) и лабораторных (гормоны щитовидной железы; маркеры воспаления, фиброза) исследований, а также выполнено генотипирование по полиморфным однонуклеотидным маркерам генов SLN (ген сарколипина), SCN5A (ген α-субъединицы потенциалзависимого натриевого канала типа V), PITX2 (ген парного гомеодомена 2), PRRX1 (ген парного гомеобокс-белка 1), ZFHX3 (ген цинково-пальцевого гомеобокс-белка), CAV (ген кавеолина).

Результаты. Для маркеров rs12291814 гена SLN и rs137854601 гена SCN5A не выявлено ни одного носителя минорного аллеля (соответственно С и А), что не противоречит литературным данным. Для полиморфных маркеров rs2200733 гена PITX2, rs3903239 гена PRRX1 и двух полиморфных маркеров rs2106261 и rs7193343 гена ZFHX3 минорный аллель является фактором риска аритмии для обеих подгрупп пациентов. Для полиморфного маркера rs3807989 гена, кодирующего кавеолин CAV1, выявлено статистически достоверное различие в частоте встречаемости минорного аллеля, при этом данный генотип оказывает протективное действие в отношении развития аритмии (OR=0,39).

Заключение. Полученные результаты показали взаимосвязь между полиморфными маркерами генов PITX2 (rs2200733; OR=3,18 p<0,0001), PRRX1 (rs3903239; OR=2,96, p<0,0001) и ZFHX3 (rs2106261; OR=2,02, p=0,045 и rs 7193343, OR=1,64, p=0,04), кодирующих факторы регуляции транскрипции, и развитием фибрилляции предсердий. Однако остаются открытыми вопросы, каким образом эти полиморфные маркеры влияют на функции генов и, соответственно, какой подход при коррекции состояния пациента с фибрилляцией предсердий будет наиболее эффективным.

Полный текст

Обоснование

Заболевания сердечно-сосудистой системы (ишемическая болезнь сердца, артериальная гипертензия, врожденные и приобретенные пороки сердца), а также такие состояния, как сахарный диабет, патология щитовидной железы, хронические обструктивные заболевания легких, способствуют возникновению фибрилляции предсердий. Однако более чем у 1/3 пациентов (до 45% случаев) [1], страдающих данным видом аритмии, установить причины и условия ее возникновения не представляется возможным. Еще в 1949 г. американским ученым E. Phillips и S. Levin было известно о возможности развития фибрилляции предсердий у людей, не имеющих какой-либо органической патологии со стороны сердечно-сосудистой системы, а в 1953 г. британскими врачами W. Ewans и P. Swann был предложен термин «изолированная фибрилляция предсердий» (lone auricular fibrillation). В настоящее время данный термин нередко встречается в литературе, хотя возможно использование таких терминов, как «идиопатическая», «функциональная» или «фибрилляция предсердий неясной этиологии».

Как правило, в основе идиопатической фибрилляции предсердий лежит генетическая предрасположенность [2]. Фибрилляцию предсердий вследствие генетических причин можно подразделить на семейную (менделевскую) и несемейную формы. Картина изменений генома, наблюдаемая при семейной форме фибрилляции предсердий, очень гетерогенна: на данный момент выделяют 17 вариантов этой аритмии в зависимости от локализации мутаций, сцепленных с патологией. Для большинства типов семейной фибрилляции предсердий характерны мутации в генах, кодирующих ионные каналы сердца (калиевые и натриевые). Данная форма фибрилляции предсердий встречается относительно редко и может быть отнесена к моногенным заболеваниям.

Больший интерес с точки зрения диагностики, лечения и прогноза представляют случаи идиопатической фибрилляции предсердий, не относящиеся к семейной форме и возникшие вследствие точечных полиморфизмов в генах, продукты которых не связаны напрямую с сокращениями предсердий. Большинство этих полиморфизмов выявлено при полногеномном поиске ассоциаций (GWAS) [3–5]. Функционально гены, полиморфизмы в которых являются факторами риска для несемейной идиопатической фибрилляции предсердий, можно подразделить на несколько групп:

  • 1-я группа — некоторые гены ионных каналов, например SCN5A и HCN4;
  • 2-я группа — гены, ответственные за кардиогенез и участвующие в регуляции активности других генов. Это, в первую очередь, гены факторов транскрипции PITX2, TBX5, ZFHX3, PRRX1, NKX2.5, NKX2.6 и гены GATA-связывающих белков. Сюда же можно (хотя и достаточно условно) отнести ген CAV1, кодирующий белок кавеолин-1, одна из функций которого заключается в регуляции активности потенциалзависимого калиевого канала Н2;
  • 3-я группа — гены-регуляторы артериального давления. Наибольший интерес представляет AGXT2, регулирующий обмен метиларгининов и участвующий в контроле артериального давления. В эту же группу входят гены ACE и GNB3, но данные о связи полиморфизмов в этих генах с фибрилляцией предсердий противоречивы [6–8];
  • 4-я группа — гены-регуляторы метаболизма кальция. Это ген PDE4D (ген субъединицы D фосфодиэстеразы 4). Белок, кодируемый этим геном, кодирует цАМФ-фосфодиэстеразу, фосфорилирующую в том числе ген рианодинового рецептора (кальцийвысвобождающего канала) RYR2 и ген сарколипина (ингибитора Ca-зависимой АТФ-азы саркоплазматического ретикулума) SLN [9].

Цель исследования — определить связь идиопатической фибрилляции предсердий с набором однонуклеотидных полиморфизмов, ассоциированных с несемейной формой этой аритмии. Список полиморфизмов приведен в табл. 1.

 

Таблица 1. Исследуемые полиморфизмы, связанные с риском идиопатической фибрилляции предсердий

Ген

Функция продукта гена

Полиморфизм

Тип нуклеотидной замены*

Локализация полиморфизма в гене

AGXT2

Контроль артериального давления

rs37369

G/A

Белок-кодирующая область (Val140Ile)

AGXT2

Контроль артериального давления

rs16899974

G/T

Белок-кодирующая область (Val498Leu)

PDE4D

Регуляция метаболизма Ca2+

rs12188950

G/A

Интрон

PDE4D

Регуляция метаболизма Сa2+

rs152312

G/A

~4 тыс. п.н. от 5’-концевой области гена PDE4D

SLN

Регуляция метаболизма Сa2+

rs12291814

G/C

3’-нетранслируемая область

SLN

Регуляция метаболизма Сa2+

rs583362

C/G

5’-нетранслируемая область

SCN5A

Na+-канал

rs1805124

A/G

Белок-кодирующая область (His558Arg)

SCN5A

Na+-канал

rs137854601

G/A

Белок-кодирующая область (Glu1783Lys)

HCN4

K+-канал

rs7164883

A/G

Интрон

CAV1

Межклеточное взаимодействие

rs3807989

G/A

Интрон

PITX2

Фактор транскрипции

rs2200733

C/T

Межгенная область (~147 тыс. п.н. от 5’-конца гена PITX2)

PITX2

Фактор транскрипции

rs10033464

G/T

Межгенная область (~157 тыс. п.н. от 5’-конца гена PITX2)

PRRX1

Фактор транскрипции

rs3903239

T/C

Межгенная область (~66 тыс. п.н. от 5’-конца гена PRRX1)

TBX5

Фактор транскрипции

rs3825214

A/G

Интрон

ZFHX3

Фактор транскрипции

rs2106261

G/A

Интрон

ZFHX3

Фактор транскрипции

rs6499600

G/A

Интрон

ZFHX3

Фактор транскрипции

rs7193343

G/A

Интрон

Примечание. * — основной аллель/минорный аллель.

 

Методы

Дизайн исследования

В данное обсервационное одноцентровое исследование последовательно, согласно критериям включения и исключения, были включены пациенты с инструментально подтвержденным диагнозом фибрилляции предсердий. Исследуемая выборка сравнивалась с группой контроля с целью оценки влияния ряда генных полиморфизмов на риск возникновения идиопатической фибрилляции предсердий в российской популяции.

Критерии соответствия

Критериями включения в исследование были наличие различных форм фибрилляции предсердий (ФП) — пароксизмальной, персистирующей или постоянной; возраст пациентов от 20 до 65 лет.

Критерии исключения: наличие ишемической болезни сердца, врожденные и приобретенные пороки сердца, экстракардиальная патология в стадии декомпенсации, беременность.

Условия проведения и продолжительность исследования

В исследование были включены пациенты с различными формами фибрилляции предсердий, находящиеся на стационарном лечении в отделении неинвазивной аритмологии и хирургического лечения комбинированной патологии (ОНА и ХЛКП) ФГБУ «НМИЦ ССХ им. А.Н. Бакулева» МЗ РФ в период с 2015 по 2018 г.

Описание медицинского вмешательства

У всех пациентов были отобраны пробы периферической крови в объеме 2 мл для выделения геномной ДНК из лейкоцитов.

Исходы исследования

Определение генотипа однонуклеидных маркеров в генах AGXT2, PDE4D, SLN, HCN4, CAV1, PITX2, PRRX1, TBX5 и ZFHX3 у пациентов с идиопатической фибрилляцией предсердий и в группе контроля.

Методы регистрации исходов

Выделение ДНК из биологического материала

ДНК выделяли из 100–200 мкл цельной крови с калиевой солью этилендиаминтетрауксусной кислоты (К2-ЭДТА). Выделение производилось с помощью набора DiaGene для выделения ДНК из цельной крови (Диаэм, Россия) и с помощью набора Genomic DNA Purification Kit (Thermo Fisher Scientific, Литва). Выделенную ДНК анализировали на спектрофотометре NanoDrop 2000 (Thermo Scientific, США) с целью определения концентрации и чистоты вещества. Во всех образцах ДНК соотношение А260280 составляло не менее 1,8, а соотношение А260230 — не менее 2. Полученные образцы содержали не менее 0,5 мкг ДНК в концентрации не менее 10 нг/мкл.

Генотипирование

Генотипирование проводили методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с флюоресцентными гидрализирующимися зондами. Для постановки ПЦР использовали готовые реакционные смеси iQ Supermix (Bio-Rad, США) и UDG-HS-qPCR (Диаэм, Россия). В реакцию брали 5 нг геномной ДНК. Условия ПЦР — согласно рекомендации производителя наборов для генотипирования (исходная денатурация 3 мин при +95°C, затем 45 циклов двухстадийной амплификации с денатурацией в течение 15 сек при +95°C и отжигом/элонгацией в течение 1 мин при +60°C). Амплификация, постамплификационный анализ флюоресценции и определение генотипа проводились на амплификаторах CFX96 (Bio-Rad, США) и LightCycler96 (Roche, Швейцария) с помощью ПО Bio-Rad CFX Manager 3.1 и LightCycler96 SW 1.1 соответственно.

Анализ в подгруппах

Разделение пациентов на подгруппы проводилось в зависимости от наличия сопутствующей артериальной гипертензии. Первую группу пациентов составили больные с изолированной формой фибрилляции предсердий, вторую — пациенты с сопутствующей артериальной гипертензией. Группа пациентов с фибрилляцией предсердий в ходе исследования была разделена на подгруппы с сопутствующей артериальной гипертензией и без таковой.

Этическая экспертиза

Протокол № 62 заседания Этического комитета Научного центра сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева РАМН от 5 марта 2014.

Статистический анализ

Размер выборки предварительно не рассчитывался. Предварительная оценка частоты аллелей и генотипов для всех полиморфизмов проводилась с помощью Microsoft Office Excel 2010. Для расчета статистической значимости различий в частоте встречаемости использовали точный двусторонний критерий Фишера и критерий Хи-квадрат. Расчеты производили как для частоты минорного аллеля, так и для частоты генотипов — гетерозигот и гомозигот по минорному аллелю (AA и Aa+aa, AA+Aa и aa). Далее для групп, где были выявлены значимые различия, рассчитывали отношения шансов (odds ratio, OR) и 95% доверительный интервал (confidence interval, CI). Расчеты проводились в высокоуровневой технической среде MATLAB 2010b с помощью программы SNPStats (www.snpstats.net). Для полиморфизмов, которые показали статистически значимое различие по частоте аллелей и генотипов между пациентами и контрольной группой, был произведен расчет соответствия полученной частоты генотипов по уравнению Харди–Вайнберга (табл. 2).

 

Таблица 2. Относительный риск минорных аллелей полиморфизмов, показавших статистическую значимость

ФП/АГ + ИФП и контрольная группа

Ген

Полиморфизм

Генотип

OR

95% CI

p

PITX2

rs2200733

CT+TT

3,18

1,94–5,22

<0,0001

PRRX1

rs3903239

CT+CC

2,96

1,77–4,96

<0,0001

ZFHX3

rs2106261

GA+AA

2,02

1,23–3,3

0,005

ZFHX3

rs7193343

GA+AA

1,64

1,02–2,65

0,04

CAV1

rs3807989

AA

0,48

0,25–0,93

0,03

ИФП и контрольная группа

Ген

Полиморфизм

Генотип

OR

95% CI

p

PITX2

rs2200733

CT+TT

3,90

2,21–6,90

<0,0001

PRRX1

rs3903239

CT+CC

3,38

1,79–6,38

0,0001

ZFHX3

rs2106261

GA+AA

2,24

1,27–3,93

0,005

ZFHX3

rs7193343

GA+AA

1,86

1,07–3,23

0,027

CAV1

rs3807989

AA

0,39

0,17–0,91

0,022

Примечание. ФП — фибрилляция предсердий, АГ — артериальная гипертензия, ИФП — идиопатическая фибрилляция предсердий.

 

Результаты

Участники исследования

В исследование было включено 174 пациента с фибрилляцией предсердий (98 мужчин и 76 женщин), подтвержденной данными электрокардиографии и/или холтеровского мониторирования (табл. 3). В контрольную группу вошли 124 человека без сердечно-сосудистой патологии. Средний возраст пациентов составил 55 лет. В соответствии с протоколом исследования все пациенты подписали информированное согласие на участие в нем.

 

Таблица 3. Клинико-инструментальная характеристика пациентов

Параметры

Среднее значение, n (%)

Возраст, лет

55±11,8

Пол, мужчины

98 (56)

Курение

36 (21)

Сахарный диабет

15 (9)

Индекс массы тела, кг/м2

28,4±4,3

Ишемический инсульт или ТИА в анамнезе

8 (5)

Форма фибрилляции предсердий:

пароксизмальная

персистирующая

90 (52)

84 (48)

Длительность фибрилляции предсердий, лет

5,9±4,9

Данные эхокардиографии:

размер левого предсердия, см

индексированный размер левого предсердия, см/м2

4,2±0,62

2,1±0,35

КДО левого желудочка, мл

индексированный КДО левого желудочка, мл/м2

118±30,3

61±12,3

Фракция выброса левого желудочка, %

65±9,6

Эффект спонтанного контрастирования в полости левого предсердия

13 (7)

Данные компьютерной томографии легочных вен:

объем левого предсердия, мл

107±43,7

Примечание. ТИА — транзиторная ишемическая атака, КДО — конечно-диастолический объем.

 

У 90 (52%) пациентов была диагностирована пароксизмальная, у 84 (48%) — персистирующая форма фибрилляции предсердий. Пациенты были разделены на две подгруппы: первую составили больные с изолированной формой фибрилляции предсердий (n=94), вторую — пациенты с сопутствующей артериальной гипертензией (n=80).

Основные результаты исследования

Полученная частота встречаемости аллелей и генотипов по анализируемым полиморфным маркерам приведена в табл. 4. Для полиморфизмов rs12291814 (SLN) и rs137854601(SCN5A) не выявлено ни одного носителя минорного аллеля (соответственно С и А) ни в группе пациентов, ни в контрольной группе. В принципе это не противоречит приводимым в базе «1000 геномов» (1000 Genomes) данным о том, что частота минорных аллелей этих полиморфизмов в европейской популяции крайне низка — менее 0,1% (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP/snp_ss.cgi?ss=ss1342864590; https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP/snp_ref.cgi?do_not_redirect&rs=rs137854601).

 

Таблица 4. Частота минорных аллелей анализируемых полиморфных маркеров (жирным шрифтом выделены полиморфизмы, для которых статистически достоверно отличается частота встречаемости у пациентов и контрольной группы)

Ген

Однонуклеотидный полиморфизм

Тип замены* (основной/минорный аллель)

Частота минорного аллеля

ФП/АГ + ИФП** (n=174)

ИФП*** (n=94)

К****

(n=124)

 

rs37369

G/A

0,115

0,116

0,125

AGXT2

rs16899974

G/T

0,225

0,243

0,219

PDE4D

rs12188950

G/A

0,187

0,169

0,188

 

rs152312

G/A

0,11

0,111

0,08

 

rs12291814

G/C

0,000

0,000

0,000

 

rs583362

C/G

0,595

0,526

0,456

 

rs1805124

A/G

0,213

0,229

0,252

 

rs137854601

G/A

0,000

0,0000

0,0000

 

rs7164883

A/G

0,253

0,2615

0,2304

 

rs3807989

G/A

0,367

0,324

0,432

 

rs2200733

C/T

0,341

0,363

0,149

 

rs10033464

G/T

0,123

0,122

0,116

 

rs3903239

T/C

0,535

0,547

0,355

 

rs3825214

A/G

0,192

0,203

0,247

 

rs2106261

G/A

0,257

0,274

0,145

 

rs6499600

G/A

0,385

0,426

0,379

 

rs7193343

G/A

0,260

0,274

0,186

Примечание. * — генотип приведен в соответствии с кодирующей цепью гена; основной аллель/минорный; ** — объединенная группа пациентов с идиопатической фибрилляцией и с фибрилляцией с сопутствующей артериальной гипертензией; *** — пациенты только с фибрилляцией предсердий без сопутствующей гипертензии; **** — контрольная группа. n — число человек в группе.

 

Для четырех из остальных маркеров выявлено статистически значимое различие по частоте встречаемости минорного аллеля между группами пациентов и контрольной группой (р<0,005). Все эти полиморфизмы локализованы в генах факторов регуляции транскрипции. Для полиморфных маркеров rs2200733 гена PITX2, rs3903239 гена PRRX1 и двух маркеров гена ZFHX3 — rs2106261 и rs7193343 — минорный аллель является фактором риска аритмии как в группе пациентов с изолированной ФП, так и в объединенной группе пациентов с изолированной ФП и ФП на фоне артериальной гипертензии.

Для полиморфного маркера rs3807989 гена кавеолина CAV1 также выявлено статистически достоверное различие в частоте встречаемости гомозиготы по минорному аллелю, но при этом значение OR риска аритмии >1 говорит в пользу того, что данный генотип является не фактором риска ФП, а оказывает протективное воздействие в отношении риска аритмии.

Для маркера rs2200733 гена PITX2 (аллель риска Т), rs3903239 гена PRRX1 (аллель риска С) и двух маркеров гена ZFHX3 — rs2106261 и rs7193343 (для обоих — аллель риска А) выявлены статистически значимые различия выборки пациентов и группы контроля по частоте встречаемости аллельных вариантов. При этом статистически значимое значение OR>1 имеет место как при анализе общей группы пациентов (изолированная фибрилляция предсердий + фибрилляция предсердий с сопутствующей артериальной гипертензией), так и при анализе группы пациентов с изолированной фибрилляцией предсердий. Для исследуемых полиморфизмов этих генов OR в группе пациентов с изолированной фибрилляцией предсердий выше, чем показатель в общей группе пациентов.

Также для полиморфного маркера rs3807989 гена кавеолина CAV1 выявлено статистически значимое различие в частоте встречаемости гомозиготы по минорному аллелю АА между пациентами и контрольной группой. Однако полученные величины OR для общей группы пациентов, а также для группы пациентов с идиопатической фибрилляцией предсердий в данном случае свидетельствуют о возможном протективном характере этого генотипа. Аналогичная картина наблюдалась для гомозиготы по минорному аллелю СС маркера rs583362 гена сарколипина SLN, но различия оказались статистически недостоверными (данные не приведены). Различия групп с изолированной фибрилляцией предсердий и фибрилляцией предсердий с сопутствующей артериальной гипертензией по частоте встречаемости аллелей и генотипов для всех остальных полиморфизмов оказались статистически незначимы.

Из табл. 4 видно, что для полиморфных маркеров rs2200733, rs3903239, rs2106261 и rs7193343 (т.е. связанных с повышенным риском ФП) увеличивается разница в частоте гетерозигот и гомозигот по минорному аллелю между пациентами и контрольной группой, если скорректировать группу пациентов, исключив из нее лиц с сопутствующей артериальной гипертензией: для rs2200733 разница составила 2,29 и 2,43 раза, для rs3903239 — 1,51 и 1,54, для rs2106261 — 1,77 и 1,89, для rs7193343 — 1,4 и 1,47. Из табл. 2 также следует, что OR риска аритмии для носителей минорных аллелей rs2200733, rs3903239, rs2106261 и rs7193343 в группе с изолированной фибрилляцией предсердий по сравнению с группой с фибрилляцией предсердий и сопутствующей артериальной гипертензией возрастает. Для генотипа АА в области полиморфного маркера rs3807989 наблюдается аналогичная ситуация: отношение шансов в группе с изолированной фибрилляцией предсердий снижается относительно общей группы пациентов.

Но незначительность этих изменений (увеличение частоты составило от 2,2 до 6,6%) не позволяет предположить, что артериальная гипертензия является фактором, влияющим на генетическую предрасположенность к фибрилляции предсердий.

Нежелательные явления

Нежелательные явления отсутствовали.

Обсуждение

Ген PITX2 кодирует один из транскрипционных факторов, регулирующих активность генов семейства PLOD (лизил-гидроксилаз проколлагена), а также играющих важную роль в развитии органов грудной полости, в частности левого предсердия и легочных вен [8]. Этот фактор также считается ключевым в асимметричном морфогенезе сердца [10]. Известно 6 транскрипционных вариантов РНК PITX2, кодирующих 3 изоформы Pitx2a, b и с. Все 3 изоформы экспрессируются в сердце. Известно, что экспрессионный профиль правого и левого предсердия различен, в том числе это касается и PITX2. С-изоформа мРНК Pitx2 экспрессируется преимущественно в левом предсердии, считается наиболее существенной в кардиогенезе и влияет на активность генов, кодирующих ионные каналы сердца [11]. М. Pérez-Hernández и соавт. приводят данные о том, что у пациентов с хронической фибрилляцией предсердий наблюдается повышенная экспрессия С-изоформы, что, предположительно, влияет на экспрессию генов KCNQ1 и KCNE1 (возможно, опосредованно — через активность гена NPPA, кодирующего натрийуретический пептид) [12]. Вообще ген PITX2 является звеном в регуляции активности целой цепочки генов, экспрессируемых в синоатриальном узле и взаимно влияющих на активность друг друга, — SHOX2, TBX3, HCN4 и PITX2 [13].

Полиморфизмы в белок-кодирующей области гена PITX2 приводят к серьезным системным нарушениям, таким как синдром Аксенфельда–Ригера [14, 15]. C точки зрения патогенеза идиопатической фибрилляции предсердий интерес представляют однонуклеотидные маркеры в некодирующей области этого гена, локализованные в 4q25, находящиеся на расстоянии от 20 до 200 тыс. пар нуклеотидов от 5’конца гена PITX2 [16], в частности rs2200733 или rs10033464, локализованные примерно в 150–160 тыс. пар нуклеотидов от 5’-конца гена PITX2. Из этих полиморфизмов наиболее существенным фактором риска фибрилляции предсердий считается rs2200733. В литературе приводятся данные о степени риска, связанной с носительством минорного аллеля Т для ряда европейских (OR=1,6–2,17) [3, 17, 18], китайской (OR=1,81) [19, 20] и индийской (OR=2,8) [21] популяций. На основании полученных нами результатов можно сделать вывод о том, что аллельный вариант Т полиморфного маркера rs2200733 является фактором риска идиопатической ФП (не связанной с гипертензией) и для российской популяции.

Генотип пациентов с фибрилляцией предсердий в области полиморфизма rs2200733 может служить прогностическим критерием эффективности терапии антиаритмическими препаратами. В последнее время этот полиморфизм рассматривается в связи с эффективностью радиочастотной абляции при аритмии. У носителей аллеля Т увеличен риск рецидива предсердной тахикардии/фибрилляции после радиочастотной абляции [22, 23]. Этот аллельный вариант также связан с увеличенным диаметром правого предсердия, при этом полиморфизмы rs2106261 и rs7193343 в гене ZFHX3, также являющиеся факторами риска идиопатической ФП и анализируемые в нашей работе, не связаны с риском рецидива аритмии. В любом случае все эти полиморфизмы можно рассматривать и как критерий при выборе тактики лечения фибрилляции предсердий, и как прогностический фактор результата лечения [24], но при этом анализировать полиморфизмы в генах транскрипционных факторов следует независимо друг от друга, поскольку их взаимное влияние не подтверждается [25].

Остается открытым вопрос, каким образом rs2200733 отражает изменение функционирования гена PITX2, и, соответственно, каким должен быть подход к лечению пациента-носителя аллеля Т с фибрилляцией предсердий. Основная гипотеза влиянии генотипа маркера rs2200733 на риск аритмии заключается в предположении, что уровень экспрессии гена PITX2 связан с генотипом в области полиморфного маркера rs2200733. Предполагается, что межгенный участок, в котором локализована область полиморфизма, является цис-регуляторным элементом, влияющим на активность промотора изоформы Pitx2c [26]. Как уже упоминалось выше, ген PITX2 влияет на активность генов KCNQ1 и KCNE1. Экспериментально установлено, что терапевтический эффект блокаторов Na-каналов зависит от уровня экспрессии С-изоформы Pitx [4, 27].

Тем не менее приводимые в литературе данные о том, влияет ли полиморфизм rs2200733 на экспрессию PITX2, и на какую именно изоформу, противоречивы. Согласно R. Martin и соавт. [4], общая экспрессия Pitx2a в ушках предсердий повышается в 2 раза в случае аллеля Т в области полиморфизма rs2200733. С другой стороны, S. Gore-Panter и соавт. приводят данные о том, что уровень экспрессии изоформы С, являющейся специфической для сердца, меняется у пациентов с ФП в анамнезе и в момент взятия биопсии (относительно пациентов с ФП в анамнезе, но с синусовым ритмом во время операции), однако корреляция между уровнем экспрессии и наличием полиморфизма не обнаружена [28]. Область гена, в которой находится полиморфизм rs2200733, в последние годы идентифицируется как последовательность, кодирующая регуляторную РНК PANCR, относящуюся к длинным некодирующим РНК [29]. Эта РНК регулирует процесс дифференцировки кардиомиоцитов, но уровень ее экспрессии также не зависит от полиморфизмов данной области 4q25.

Не исключено, что экспрессия гена PITX2 при фибрилляции предсердий находится в зависимости от других генетических факторов. Например, J. Ye с соавт. приводят данные о том, что снижение уровня экспрессии Pitx2c в случае минорного аллеля rs2595104 является следствием нарушения взаимодействия энхансерной области гена PITX2 и регуляторного белка TFAP2a [30]. Целесообразным кажется поиск факторов регуляции — кандидатов на взаимодействие с локусом, в котором расположен rs2200733. Также возможно, что противоречивые данные о влиянии rs2200733 на экспрессию PITX2 связаны c ограниченным числом анализируемых образцов.

Перспективным представляется анализ активности комплекса генов, специфически экспрессируемых в левом предсердии пациентов с фибрилляцией, особенно с учетом быстрого накопления информации благодаря активно проводимым исследованиям в этом направлении [11, 31].

Ген ZFHX3 также кодирует фактор транскрипции, регулирующий мио- и нейрогенез. Y. Huang и соавт. предложена модель молекулярного механизма с участием этого гена и его продукта, а также с участием других факторов регуляции транскрипции [32]. Согласно этой модели, гены ZFHX3 и PITX2 позитивно регулируют экспрессию друг друга по принципу обратной связи и в то же время совместно участвуют в регуляции экспрессии генов других транскрипционных факторов — NPPA, TBX5 и NKX2.5. Согласно данным Y. Huang и соавт. [32], минорные аллели rs2106261 и rs2200733 обладают кумулятивным эффектом в отношении риска фибрилляции предсердий.

Распределение полиморфных маркеров в гене ZFHX3, ассоциированных с фибрилляцией предсердий, варьирует в зависимости от исследуемой популяции. Полученные нами результаты говорят о том, что частота встречаемости у контрольной группы минорных аллелей rs2106261 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP/submissions 1356832575, 3025162) и rs7193343 (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP/submissions 1356831870, 90439261) в российской популяции сходны с таковыми для европейской популяции (данные 1000 Genomes и HapMap).

Ген PRRX1 кодирует фактор регуляции транскрипции, влияющий на активность множества факторов роста и дифференцировки. Полиморфный маркер rs3903239 впервые подробно был проанализирован в связи с аритмией [33] и рассматривался как фактор риска идиопатической фибрилляции предсердий. В отличие от PITX2 и ZFHX3, механизм влияния этого гена на развитие ФП практически не исследован; известно, что он участвует в развитии крупных кровеносных сосудов, являясь фактором регуляции пролиферации гладкомышечных клеток [34, 35]. Имеющаяся на данный момент информация о влиянии полиморфизмов гена PRRX1 на возникновение ФП касается только наличия самого факта связи полиморфизмов этого гена и риска ФП [36, 37]. Поскольку анализируемый полиморфизм находится на расстоянии 66 тыс. пар нуклеотидов от 5’-конца гена PRRX1, было бы логичным предположить, что данная область каким-то образом ответственна за регуляцию активности этого гена. Стоит отметить, что аллель C маркера rs3903239 является доминирующим у жителей Юго-Восточной Азии (данные 1000 Genomes и HapMap; https://www.ncbi.nlm.nih.gov/projects/SNP/submissions 1293377402, 20506462); более того, в китайской популяции фактором риска, хотя и незначительным (OR=1,14), считается аллель Т(А) в области rs3903239 [38]. В последнее время появилась новая информация о влиянии точечных полиморфизмов в регуляторных областях гена PRRX1 на активность этого гена и риск возникновения аритмии. N. Tucker и соавт. приводят данные о том, что минорный аллель С полиморфного маркера rs577676, локализованного в энхансерной области гена PRRX1, снижает экспрессию этого гена [39]. С помощью моделей с нокаутированным геном PRRX1 показано, что такое снижение приводит к возникновению электрофизиологического фенотипа, связанного с риском фибрилляции. В дальнейшем по аналогии с PITX2 [30] необходимо выявить влияющие на транскрипцию гена PRRX1 факторы, активность которых модулируется полиморфизмами в регуляторных областях [39].

Ограничения исследования

Ограничением для данного исследования, как и в случае аналогичных исследований, является недостаточно репрезентативная выборка вследствие популяционной специфичности ассоциаций, исследуемых в данной работе. Хотя после математической обработки данных было выявлено статистически достоверное различие между частотой встречаемости аллельных вариантов ряда полиморфизмов у пациентов и контрольной группы, у распределения аллелей имело место отклонение от соотношения Харди–Вайнберга. В случае пациентов это отклонение может быть связано с критерием отбора в группу (наличие заболевания).

Заключение

Полученные результаты показали, что полиморфные маркеры генов PITX2, PRRX1 и ZFHX3, кодирующих факторы регуляции транскрипции, ассоциированы с риском развития фибрилляции предсердий. Однако остается открытым вопрос, каким образом эти полиморфные маркеры влияют на функции генов и, соответственно, какой должен быть подход при коррекции состояния пациента с фибрилляцией предсердий. В связи с этим целесообразно выяснить влияние аллельных вариантов исследованных маркеров на активность гена, в котором они расположены, а в перспективе — рассмотреть возможность коррекции измененной активности гена.

Дополнительная информация

Источник финансирования. Исследование выполнено в рамках комплексной темы ФГБУ «НМИЦ ССХ им. А.Н. Бакулева» МЗ РФ «Механизмы развития, электрофизиологические и нейрогуморальные предикторы злокачественных аритмий (ФП, ЖТ) и жизнеугрожающих состояний» № 115021210156.

Конфликт интересов. Авторы данной статьи подтвердили отсутствие конфликта интересов, о котором необходимо сообщить.

Участие авторов: Голухова Е.З.разработка концепции и дизайна исследования, анализ полученных данных, редактирование текста; Минашкин М.М.разработка дизайна исследования, анализ полученных данных, статистическая обработка данных; Булаева Н.И.разработка концепции и дизайна исследования, анализ полученных данных; Жолбаева А.З.сбор материала, подготовка текста; Аракелян М.Г.сбор материала, редактирование текста. Все авторы внесли существенный вклад в проведение исследования и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию до публикации.

×

Об авторах

Елена Зеликовна Голухова

Национальный медицинский исследовательский центр сердечно-сосудистой хирургии имени А.Н. Бакулева

Email: egolukhova@yahoo.com
ORCID iD: 0000-0002-6252-0322
SPIN-код: 9334-5672

д.м.н., профессор, академик РАН

Россия, 121552, г. Москва, Рублевское ш., д. 135

Айгерим Замирбековна Жолбаева

Национальный медицинский исследовательский центр сердечно-сосудистой хирургии имени А.Н. Бакулева

Автор, ответственный за переписку.
Email: zamirbekkyzy@list.ru
ORCID iD: 0000-0002-6918-7016
SPIN-код: 3348-5569
Россия, 121552, г. Москва, Рублевское ш., д. 135

Мари Генриковна Аракелян

Национальный медицинский исследовательский центр сердечно-сосудистой хирургии имени А.Н. Бакулева

Email: mariarakelyan@gmail.com
ORCID iD: 0000-0001-5089-0169
SPIN-код: 9161-9888
Россия, 121552, г. Москва, Рублевское ш., д. 135

Наида Ибадуллаевна Булаева

Национальный медицинский исследовательский центр сердечно-сосудистой хирургии имени А.Н. Бакулева

Email: naida_bulaeva@yahoo.com
ORCID iD: 0000-0002-5091-0518
SPIN-код: 8979-7098

д.м.н.

Россия, 121552, г. Москва, Рублевское ш., д. 135

Михаил Михайлович Минашкин

ООО «Диаэм»

Email: mminashkin@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0726-7563
SPIN-код: 5693-0057
Россия, Москва

Список литературы

  1. Weijs B, Pisters R, Nieuwlaat R, et al. Idiopathic atrial fibrillation revisited in a large longitudinal clinical cohort. Europace. 2012;14(2):184–190. doi: 10.1093/europace/eur379.
  2. Lubitz SA, Yin X, Fontes JD, et al. Association between familial atrial fibrillation and risk of new-onset atrial fibrillation. JAMA. 2010;304(20):2263–2269. doi: 10.1001/jama.2010.1690.
  3. Gudbjartsson DF, Arnar DO, Helgadottir A, et al. Variants conferring risk of atrial fibrillation on chromosome 4q25. Nature. 2007;448(7151):353–357. doi: 10.1038/nature06007.
  4. Martin RI, Babaei MS, Choy MK, et al. Genetic variants associated with risk of atrial fibrillation regulate expression of PITX2, CAV1, MYOZ1, C9orf3 and FANCC. J Mol Cell Cardiol. 2015;85:207–214. doi: 10.1016/j.yjmcc.2015.06.005.
  5. Benjamin EJ, Rice KM, Arking DE, et al. Variants in ZFHX3 are associated with atrial fibrillation in individuals of European ancestry. Nat Genet. 2009;41(8):879–881. doi: 10.1038/ng.416.
  6. Schreieck J, Dostal S, von Beckerath N, C825T polymorphism of the G-protein beta3 subunit gene and atrial fibrillation: association of the TT genotype with a reduced risk for atrial fibrillation. Am Heart J. 2004;148(3):545–550. doi: 10.1016/j.ahj.2004.03.024.
  7. Zhao LQ, Wen ZJ, Wei Y, et al. Polymorphisms of renin-angiotensin-aldosterone system gene in chinese han patients with nonfamilial atrial fibrillation. PLoS One. 2015;10(2):e0117489. doi: 10.1371/journal.pone.0117489.
  8. Mommersteeg MT, Brown NA, Prall OW, et al. Pitx2c and Nkx2-5 are required for the formation and identity of the pulmonary myocardium. Circ Res. 2007;101(9):902–909. doi: 10.1161/CIRCRESAHA.107.161182.
  9. Lehnart SE, Wehrens XH, Reiken S, et al. Phosphodiesterase 4D deficiency in the ryanodine-receptor complex promotes heart failure and arrhythmias. Cell. 2005;123(1):25–35. doi: 10.1016/j.cell.2005.07.030.
  10. Galli D, Domínguez JN, Zaffran S, et al. Atrial myocardium derives from the posterior region of the second heart field, which acquires left-right identity as Pitx2c is expressed. Development. 2008;135(6):1157–1167. doi: 10.1242/dev.014563.
  11. Hsu J, Hanna P, van Wagoner DR, et al. Whole genome expression differences in human left and right atria ascertained by RNA sequencing. Circ Cardiovasc Genet. 2012;5(3):327–335. doi: 10.1161/CIRCGENETICS.111.961631.
  12. Pérez-Hernández M, Matamoros M, Barana A, et al. Pitx2c increases in atrial myocytes from chronic atrial fibrillation patients enhancing IKs and decreasing ICa,L. Cardiovasc Res. 2016;109(3):431–441. doi: 10.1093/cvr/cvv280.
  13. Van Weerd JH, Christoffels VM. The formation and function of the cardiac conduction system. Development. 2016;143(2):197–210. doi: 10.1242/dev.124883.
  14. Franco D, Christoffels VM, Campione M. Homeobox transcription factor Pitx2: The rise of an asymmetry gene in cardiogenesis and arrhythmogenesis. Trends Cardiovasc Med. 2014;24(1):23–31. doi: 10.1016/j.tcm.2013.06.001.
  15. Yang HJ, Lee YK, Joo CK, et al. A Family with axenfeld-rieger syndrome: report of the clinical and genetic findings. Korean J Ophthalmol. 2015;29(4):249–255. doi: 10.3341/kjo.2015.29.4.249.
  16. Lubitz SA, Lunetta KL, Lin H, et al. Novel genetic markers associate with atrial fibrillation risk in Europeans and Japanese. J Am Coll Cardiol. 2014;63(12):1200–1210. doi: 10.1016/j.jacc.2013.12.015.
  17. Viviani Anselmi C, Novelli V, Roncarati R, et al. Association of rs2200733 at 4q25 with atrial flutter/fibrillation diseases in an Italian population. Heart. 2008;94(11):1394–1396. doi: 10.1136/hrt.2008.148544.
  18. Henningsen KM, Olesen MS, Haunsoe S, Svendsen JH. Association of rs2200733 at 4q25 with early onset of lone atrial fibrillation in young patients. Scand Cardiovasc J. 2011;45(6):324–326. doi: 10.3109/14017431.2011.594081.
  19. Shi L, Li C, Wang C, et al. Assessment of association of rs2200733 on chromosome 4q25 with atrial fibrillation and ischemic stroke in a Chinese Han population. Hum Genet. 2009;126(6):843–849. doi: 10.1007/s00439-009-0737-3.
  20. Lee KT, Yeh HY, Tung CP, et al. Association of RS2200733 but not RS10033464 on 4q25 with atrial fibrillation based on the recessive model in a Taiwanese population. Cardiology. 2010;116(3):151–156. doi: 10.1159/000318172.
  21. Bhanushali A, Nair A, Jagdale G, et al. Association of genetic variants at the 4q25 locus with atrial fibrillation in indian population. J Clin Lab Anal. 2017;31(1). doi: 10.1002/jcla.22017.
  22. Chen F, Yang Y, Zhang R, et al. Polymorphism rs2200733 at chromosome 4q25 is associated with atrial fibrillation recurrence after radiofrequency catheter ablation in the Chinese Han population. Am J Transl Res. 2016;8(2):688–697.
  23. Shoemaker MB, Bollmann A, Lubitz SA, et al. Common genetic variants and response to atrial fibrillation ablation. Circ Arrhythm Electrophysiol. 2015;8(2):296–302. doi: 10.1161/CIRCEP.114.001909.
  24. Huang H, Darbar D. Gene-guided therapy for catheter-ablation of atrial fibrillation: are we there yet? J Interv Card Electrophysiol. 2016;45(1):3–5. doi: 10.1007/s10840-015-0086-1.
  25. Lin H, Mueller-Nurasyid M, Smith AV, et al. Gene-gene interaction analyses for atrial fibrillation. Sci Rep. 2016;6:35371. doi: 10.1038/srep35371.
  26. Aguirre LA, Alonso ME, Badía-Careaga C, et al. Long-range regulatory interactions at the 4q25 atrial fibrillation risk locus involve PITX2c and ENPEP. BMC Biol. 2015;13:26. doi: 10.1186/s12915-015-0138-0.
  27. Syeda F, Holmes AP, Yu TY, et al. PITX2 modulates atrial membrane potential and the antiarrhythmic effects of sodium-channel blockers. J Am Coll Cardiol. 2016;68(17):1881–1894. doi: 10.1016/j.jacc.2016.07.766.
  28. Gore-Panter SR, Hsu J, Hanna P, et al. Atrial Fibrillation associated chromosome 4q25 variants are not associated with PITX2c expression in human adult left atrial appendages. PLoS One. 2014;9(1):e86245. doi: 10.1371/journal.pone.0086245.
  29. Gore-Panter SR, Hsu J, Barnard J, e al. PANCR, the PITX2 adjacent noncoding RNA, is expressed in human left atria and regulates PITX2c expression. Circ Arrhythm Electrophysiol. 2016;9(1):e003197. doi: 10.1161/CIRCEP.115.003197.
  30. Ye J, Tucker NR, Weng LC, et al. A functional variant associated with atrial fibrillation regulates PITX2c expression through TFAP2a. Am J Hum Genet. 2016;99(6):1281–1291. doi: 10.1016/j.ajhg.2016.10.001.
  31. Lin H, Dolmatova EV, Morley MP, et al. Gene expression and genetic variation in human atria. Heart Rhythm. 2014;11(2):266–271. doi: 10.1016/j.hrthm.2013.10.051.
  32. Huang Y, Wang C, Yao Y, et al. Molecular basis of gene-gene interaction: cyclic cross-regulation of gene expression and post-GWAS gene-gene interaction involved in atrial fibrillation. PLoS Genet. 2015;11(8):e1005393. doi: 10.1371/journal.pgen.1005393.
  33. Ellinor PT, Lunetta KL, Albert CM, e al. Meta-analysis identifies six new susceptibility loci for atrial fibrillation. Nat Genet. 2012;44(6):670–675. doi: 10.1038/ng.2261.
  34. Ihida-Stansbury K, McKean DM, Gebb SA, et al. Paired-related homeobox gene Prx1 is required for pulmonary vascular development. Circ Res. 2004;94(11):1507–1514. doi: 10.1161/01.RES.0000130656.72424.20.
  35. Jones FS, Meech R, Edelman DB, et al. Prx1 controls vascular smooth muscle cell proliferation and tenascin-C expression and is upregulated with Prx2 in pulmonary vascular disease. Circ Res. 2001;89(2):131–138. doi: 10.1161/hh1401.093582.
  36. Lin H, Sinner MF, Brody JA, et al. Targeted sequencing in candidate genes for atrial fibrillation: the cohorts for heart and aging research in genomic epidemiology (CHARGE) targeted sequencing study. Heart Rhythm. 2014;11(3):452–457. doi: 10.1016/j.hrthm.2013.11.012.
  37. Tsai CT, Hsieh CS, Chang SN, et al. Next-generation sequencing of nine atrial fibrillation candidate genes identified novel de novo mutations in patients with extreme trait of atrial fibrillation. J Med Genet. 2015;52(1):28–36. doi: 10.1136/jmedgenet-2014-102618.
  38. Liu Y, Ni B, Lin Y, et al. The rs3807989 G/A polymorphism in CAV1 is associated with the risk of atrial fibrillation in Chinese Han populations. Pacing Clin Electrophysiol. 2015;38(2):164–170. doi: 10.1111/pace.12494.
  39. Tucker NR, Dolmatova EV, Lin H, et al. Diminished PRRX1 expression is associated with increased risk of atrial fibrillation and shortening of the cardiac action potential. Circ Cardiovasc Genet. 2017;10(5). pii: e001902. doi: 10.1161/CIRCGENETICS.117.001902.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Издательство "Педиатръ", 2019



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах