Содержание миокинов в сыворотке крови у пациентов с эндогенным гиперкортицизмом и акромегалией: одномоментное исследование «случай−контроль»

Обложка


Цитировать

Полный текст

Аннотация

Резюме: Миокины продуцируются и высвобождаются миоцитами в ответ на сокращения мышц. Эндогенный гиперкортицизм и акромегалия вызывают значимые изменения в мышечной ткани, приводящие к ее атрофии или гипертрофии. Вместе с тем, нет данных, влияют ли эти эндокринные нарушения на секреторную функцию мышц.

Цель: оценить сывороточное содержание миокинов (интерлейкин-6, миостатин, иризин) у пациентов с эндогенным гиперкортицизмом и акромегалией.

Материалы и методы: Для проведения исследования взяты образцы сывороток тощаковой крови, замороженные при T° ≤-20ºC, у лиц с подтвержденной активностью болезни Иценко-Кушинга (БИК) и акромегалии и у здоровых добровольцев, подобранных по возрасту, полу и индексу массы тела (ИМТ). Исследование проведено одномоментно на базе отделения нейроэндокринологии и остеопатий ФГБУ «Эндокринологический научный центр». Для определения уровня миокинов использованы коммерчески доступные наборы для иммуноферментного анализа. У всех включенных лиц сила сжатия кисти измерялась ручным динамометром. Инсулиноподобный фактор роста 1 (ИФР-1) и свободный кортизол в суточной моче определялись иммунохемилюминесцентным методом, свободный кортизол в слюне - электрохемилюминесцентным методом. Для оценки различий между группами использован однофакторный дисперсионный анализ ANOVA.

Результаты: В исследование включены 88 человек [30 пациентов с болезнью Иценко-Кушинга (группа 1), 28 с акромегалией (группа 2) и 30 условно здоровых лиц (группа 3)], без различий по полу, возрасту и ИМТ между группами (p=0,492, 0,062 и 0,174 соответственно). Среднее значение свободного кортизола в суточной моче у пациентов с БИК и средний уровень ИРФ-1 у пациентов с акромегалией были значимо выше, нежели в других группах (p<0,001). Сила сжатия правой кисти была ниже у пациентов с БИК по сравнению с пациентами, страдающими акромегалией и со здоровыми лицами (p=0,04). Однако не было найдено статистически значимых различий в измеренных уровнях миокинов: иризин - p=0,15; ИЛ-6 - p=0,34; миостатин - p=0,50. В каждой подгруппе и в целом среди пациентов имелась корреляционная связь между уровнем миостатина и иризина (p<0,001), но не ИЛ-6. Не выявлено зависимости между уровнем миокинов и кортизолом в суточной моче или ИРФ1 как в целом, так и в отдельных группах.

Вывод: эндогенный гиперкортицизм (болезнь Иценко-Кушинга) и супрафизиологический уровень ИРФ-1 значимо не влияют на сывороточные уровни миостатина, ИЛ-6 и иризина у молодых пациентов.

Об авторах

Тимур Тамерланович Цориев

Эндокринологический научный центр, Москва

Автор, ответственный за переписку.
Email: timur.tsoriev@gmail.com

Аспирант отделения нейроэндокринологии и остеопатий 

Адрес: 117036, Москва, ул. Дмитрия Ульянова, д. 11

Россия

Жанна Евгеньевна Белая

Эндокринологический научный центр, Москва

Email: jannabelaya@gmail.com
Доктор медицинских наук, главный научный сотрудник, заведующая отделением нейроэндокринологии и остеопатий Россия

Людмила Яковлевна Рожинская

Эндокринологический научный центр, Москва

Email: rozhinskaya@rambler.ru
Доктор медицинских наук, профессор, главный научный сотрудник отделения нейроэндокринологии и остеопатий Россия

Галина Афанасьевна Мельниченко

Эндокринологический научный центр, Москва

Email: teofrast2000@mail.ru
Академик РАН, доктор медицинских наук, профессор, директор Института клинической эндокринологии Россия

Татьяна Алексеевна Гребенникова

Эндокринологический научный центр, Москва

Email: grebennikova@hotmail.com
Клинический ординатор второго года обучения Россия

Александр Викторович Ильин

Эндокринологический научный центр, Москва

Email: alexilin2005@yandex.ru
Заведующий клинико-диагностической лабораторией  Россия

Лариса Вячеславовна Никанкина

Эндокринологический научный центр, Москва

Email: larisanikan@rambler.ru
Кандидат медицинских наук, ведущий научный сотрудник клинико-диагностической лаборатории Россия

Иван Иванович Дедов

Эндокринологический научный центр, Москва

Email: dedov@endocrincentr.ru
Академик РАН, доктор медицинских наук, профессор, директор Россия

Список литературы

  1. Pedersen BK, Febbraio MA. Muscle as an endocrine organ: focus on muscle-derived interleukin-6. Physiol Rev. 2008;88(4):1379–1406. doi: 10.1152/physrev.90100.2007.
  2. Pedersen BK, Febbraio MA. Muscles, exercise and obesity: skeletal muscle as a secretory organ. Nat Rev Endocrinol. 2012;8(8):457–465. doi: 10.1038/nrendo.2012.49.
  3. Pratesi A, Tarantini F, Di Bari M. Skeletal muscle: an endocrine organ. Clin Cases Miner Bone Metab. 2013;10(1):11–14. doi: 10.11138/ccmbm/2013.10.1.011.
  4. Pedersen L, Hojman P. Muscle-to-organ cross talk mediated by myokines. Adipocyte. 2012;1(3):164–167. doi: 10.4161/adip.20344.
  5. Friedenreich CM, Orenstein MR. Physical activity and cancer prevention: etiologic evidence and biological mechanisms. J Nutr. 2002;132(11 Suppl):3456–3464.
  6. Holick CN, Newcomb PA, Trentham-Dietz A, et al. Physical activity and survival after diagnosis of invasive breast cancer. Cancer Epidemiol Biomarkers Prev. 2008;17(2):379–386. doi: 10.1158/1055-9965.EPI-07-0771.
  7. Hojman P, Dethlefsen C, Brandt C, et al. Exercise-induced muscle-derived cytokines inhibit mammary cancer cell growth. Am J Physiol Endocrinol Metab. 2011;301(3):E504–510. doi: 10.1152/ajpendo.00520.2010.
  8. Allen DL, Hittel DS, McPherron AC. Expression and function of myostatin in obesity, diabetes, and exercise adaptation. Med Sci Sports Exerc. 2011;43(10):1828–1835. doi: 10.1249/MSS.0b013e3182178bb4.
  9. Cohen S, Nathan JA, Goldberg AL. Muscle wasting in disease: molecular mechanisms and promising therapies. Nat Rev Drug Discov. 2015;14(1):58–74. doi: 10.1038/nrd4467.
  10. Rana KS, Arif M, Hill EJ, et al. Plasma irisin levels predict telomere length in healthy adults. Age (Dordr). 2014;36(2):995–1001. doi: 10.1007/s11357-014-9620-9.
  11. Белая Ж.Е., Рожинская Л.Я., Драгунова Н.В., и др. Метаболические осложнения эндогенного гиперкортицизма. Выбор пациентов для скрининга // Ожирение и метаболизм. — 2013. — №1. — С. 26–31. [Belaya ZE, Rozhinskaya LY, Dragunova NV, et al. Metabolic complications of endogenous Cushing: patient selection for screening. Obesity and metabolism. 2013;(1):26-31. (In Russ).] doi: 10.14341/2071-8713-5068.
  12. Драгунова Н.В., Белая Ж.Е., Рожинская Л.Я. Состояние костно-мышечной системы при эндогенном гиперкортицизме // Остеопороз и остеопатии. — 2012. — №3. — С. 18–24. [Dragunova NV, Belaya ZE, Rozhinskaya LY. Musculoskeletal system in the endogenous hypercortisolism. Osteoporosis and osteopathy. 2012;(3):18–24. (In Russ).].
  13. Потешкин Ю.Е., Пронин В.С., Мельниченко Г.А., и др. Влияние избытка гормона роста и ИФР-1 на костно-суставную систему при акромегалии // Актуальная эндокринология. — 2015. — №10. — С. 1–30. [Poteshkin YE, Pronin VS, Melnichenko GA, et al. Growth hormone and IGF-1 effects on articular and skeletal system in acromegaly. Aktual’naya endokrinologiya. 2015;(10):1–30. (In Russ).] doi: 10.18508/endo3539.
  14. Halse J, Haugen HN. Calcium and phosphate metabolism in acromegaly. Acta Endocrinol (Copenh). 1980;94(4):459–467.
  15. Borg SA, Kerry KE, Baxter L, et al. Expression of interleukin-6 and its effects on growth of HP75 human pituitary tumor cells. J Clin Endocrinol Metab. 2003;88(10):4938–4944. doi: 10.1210/jc.2002-022044.
  16. Shyu KG, Ko WH, Yang WS, et al. Insulin-like growth factor-1 mediates stretch-induced upregulation of myostatin expression in neonatal rat cardiomyocytes. Cardiovasc Res. 2005;68(3):405–414. doi: 10.1016/j.cardiores.2005.06.028.
  17. Gaussin V, Depre C. Myostatin, the cardiac chalone of insulin-like growth factor-1. Cardiovasc Res. 2005;68(3):347–349. doi: 10.1016/j.cardiores.2005.09.007.
  18. Demirpence M, Yilmaz H, Colak A, et al. The effect of sleeve gastrectomy on serum irisin levels in patients with morbid obesity. Endokrynol Pol. 2016. doi: 10.5603/EP.a2016.0029.
  19. Polyzos SA, Kountouras J, Anastasilakis AD, et al. Irisin in patients with nonalcoholic fatty liver disease. Metabolism. 2014;63(2):207–217. doi: 10.1016/j.metabol.2013.09.013.
  20. Li L, Rampersad S, Wang X, et al. Serum irisin concentrations were increased after transient continuous subcutaneous insulin infusion in type 2 diabetes mellitus patients. Diabetes Res Clin Pract. 2016;113:44–47. doi: 10.1016/j.diabres.2016.01.030.
  21. Белая Ж.Е., Смирнова О.М., Дедов И.И. Роль физических нагрузок в норме и при сахарном диабете // Проблемы эндокринологии. — 2005. — Т. 51. — №2. — С. 28–37. [Belaya ZE, Smirnova OM, Dedov II. Rol’ fizicheskikh nagruzok v norme i pri sakharnom diabete. Probl Endokrinol (Mosc). 2005;51(2):8–37. (In Russ).]
  22. Garcia-Fontana B, Reyes-Garcia R, Morales-Santana S, et al. Relationship between myostatin and irisin in type 2 diabetes mellitus: a compensatory mechanism to an unfavourable metabolic state? Endocrine. 2016;52(1):54–62. doi: 10.1007/s12020-015-0758-8.

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML

© Издательство "Педиатръ", 2016



Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах