Геномное редактирование для оптимизации синтеза и повышения терапевтической эффективности рекомбинантных моноклональных антител

Полный текст

Введение

Согласно опубликованным финансовым отчетам, по состоянию на декабрь 2017 г. моноклональные антитела (МКА) продавали 22 компании; объем продаж превысил 98 млрд долларов США, что на 18,3 % больше, чем в 2016 г. По прогнозам, уровень продаж моноклональных антител к 2022 г. вырастет до 137−200 млрд долларов [1]. Интерес к использованию моноклональных антител в терапии ряда заболеваний обусловлен их высокой аффинностью, т.е. силой взаимодействия веществ, и высокой авидностью ― стабильностью комплекса антитело−антиген. Для лечения онкологических заболеваний большое внимание направлено на применение биспецифических Fab-антител, первое из которых было зарегистрировано в 2014 г. ― Blinatumomab, торговое наименование Blincyto. Отличительной чертой биспецифических антител является разная специфичность каждого из двух Fab-фрагментов одного антитела, что способствует взаимодействию между цитотоксическими Т-клетками и патогенными мишенями (в данном случае ― раковыми клетками). В 2017 г. было разрешено к использованию первое полноразмерное биспецифическое гуманизированное моноклональное антитело класса IgG4 (эмицизумаб, торговое название Hemlibra). Всего к концу 2017 г. в Управлении по санитарному надзору за качеством пищевых продуктов и медикаментов (Food and Drug Administration, FDA) зарегистрировано 57 терапевтических моноклональных антител.

Использование современных технологий и получение полностью человеческих моноклональных антител позволило значительно снизить иммуногенность препаратов, однако возможность проявления побочных эффектов осталась. Например, в марте 2018 г. был запрещен препарат Zinbryta (Biogen, США), предназначенный для терапии рассеянного склероза, после сообщений о провоцировании им менингитов у пациентов. Для минимизации нежелательных эффектов необходимо четко понимать факторы, влияющие на появление побочных эффектов.

Моноклональные антитела: общие сведения

Общая характеристика терапевтических моноклональных антител

Первые терапевтические антитела были мышиными. Однако вскоре было выявлено, что при длительном применении мышиных моноклональных антител у пациентов начинали синтезироваться человеческие антимышиные антитела (human antimurine antibody, HAMA), которые оказывали нейтрализующий эффект. Для того чтобы снизить иммунный ответ на мышиные антитела, были разработаны химерные (34 % «мышиного» содержания) моноклональные антитела, а затем и гуманизированные (5−10 % «мышиного» содержания). К настоящему времени среди всех терапевтических моноклональных антител 54 % представлены полностью человеческими, которые содержат только генетические последовательности человека, 32 % ― гуманизированными и 14 % ― химерными. В 2017 г. 2/3 вновь утвержденных FDA моноклональных антител были представлены полностью человеческими антителами. Большинство (79 %) коммерческих терапевтических моноклональных антител принадлежат подклассу иммуноглобулина (immunoglobulin, Ig) G1 и около 70 % несут легкую каппа-цепь. Таким образом, наметилась тенденция к внедрению в терапию полностью человеческих моноклональных антител.

Клеточные линии для получения моноклональных антител

В качестве платформы для получения человеческих моноклональных антител доминирующее место занимают клетки млекопитающих. Это главным образом связано с их уникальной способностью осуществлять посттрансляционную модификацию белков, прежде всего гликозилирование, что необходимо для получения терапевтически эффективных иммуноглобулинов и обеспечения желаемого периода полужизни моноклональных антител в организме человека.

Ведущее место среди клеток млекопитающих в производстве моноклональных антител занимает технология с использованием клеток яичника китайского хомячка (Chinese hamster ovary, СНО) ― 60 %. Для производства рекомбинантных моноклональных антител используются также несекретирующие IgG-линии мышиных клеток NS0 и Sp2/0. Однако в этих клетках при созревании моноклональных антител начинают экспрессироваться два иммуногенных для человека гликановых эпитопа ― галактоза-альфа-1,3-Gal (alpha-gal) и N-гликолил-нейраминовая кислота (Neu5Gc) [2]. Оба эпитопа отсутствуют в клетках линии яичника китайского хомячка и клеточной линии почек детеныша хомяка (baby hamster kidney, BHK), так же используемую для получения моноклональных антител. Кроме того, выход конечного продукта в зарегистрированных клеточных культурах NS0 обычно в 10 раз ниже по сравнению с культурой клеток яичника китайского хомячка.

В качестве источника получения моноклональных антител рассматривались также клетки эмбриональной почки человека (human embryonic kidney 293, HEK) и PER. C6 (ретинобласт плода, иммортализованный при трансфекции минигеном E1 аденовируса типа 5), в которых гликозилирование белков происходит идентично процессу гликозилирования антител в плазматических клетках человека. Однако использование этих клеточных линий ограничено низким выходом конечного продукта.

Клеточная линия яичника китайского хомячка (СНО): характеристика, геномное редактирование

Характеристика клеточной линии яичника китайского хомячка

Первоначальная клеточная линия яичника китайского хомячка была получена в 1958 г. из культивируемых клеток яичника самки инбредного китайского хомяка [3]. Клетки линии яичника китайского хомячка характеризуются высокой изменчивостью и на уровне поколений подвергаются сотням тысяч уникальных мутаций. Это приводит к тому, что в клеточной культуре могут появляться мутанты, отличающиеся по генотипу от исходных клеток яичника китайского хомячка. Такие группы родственных клеток называют квазивидами. Различные клеточные линии CHO, такие как CHO-K1, CHO-S и DG44, отличаются по гено- и фенотипу. Степень их родства в структуре генома, составе геномных последовательностей и в паттернах транскрипции не была изучена, и поэтому отсутствуют данные об их сходстве. Если учесть наблюдаемую изменчивость и разнообразие геномных структур в иммортализованных клетках в целом, каждая из вышеупомянутых клеточных линий яичника китайского хомячка представляет собой «квазивид». Этот термин был введен для описания культуральной среды с высокой частотой мутаций клеток, где большая группа пролиферирующих клеток отличается по крайней мере одной мутацией от исходных клеток [4].

Несмотря на высокий уровень мутаций клетки яичника китайского хомячка безопасно использовать в качестве продуцентов моноклональных антител, так как они не переносят патогенных вирусов человека, в их генетический аппарат легко трансформируется ДНК, и они достаточно быстро растут (время удвоения ― 14−22 ч). Преимуществом использования клеток яичника китайского хомячка в сравнении с клеточными линиями NSO, BNK или HEK-293 являются их более эффективная трансфекция, амплификация генов и селекция высокопродуктивных клонов. Кроме того, клетки яичника китайского хомячка способны расти в высокой концентрации в суспензионной культуре, не образуя агрегатов и осадка [5].

Недостатком при производстве рекомбинантных белков в клеточных линиях яичника китайского хомячка является высокая себестоимость целевого продукта. Для снижения затрат при получении высокопродуктивных клеточных культур исследования проводятся по нескольким направлениям. Первое направление заключается в разработке новых экспрессирующих векторов, содержащих в своем составе регуляторные элементы, обеспечивающие стабильность трансгена в геноме-реципиенте и повышение уровня синтеза белка. Второе направление, которое мы рассмотрим более детально, предполагает редактирование генома клеток-продуцентов яичника китайского хомячка с целью увеличения выхода продукта и улучшения его характеристик.

Геномное редактирование клеток яичника китайского хомячка

Первоначальные попытки редактирования клеток яичника китайского хомячка были связаны с применением метода гомологичной рекомбинации, основанного на случайной интеграции целевого гена в геном с последующим отбором трансгенных клеток. Недостатком этого метода являлось отсутствие контроля за сайтом внедрением генов, что в ряде случаев приводило к нежелательной фенотипической гетерогенности. Для увеличения экспрессии целевых белков использовались методы генной амплификации. Однако полученные таким методом клеточные линии часто нестабильны и показывают снижение продукции с течением времени.

Внедрение трансгенов в специфические сайты генома клеток яичника китайского хомячка контролируемым образом уменьшает вариацию в экспрессии, создавая однородную популяцию со стабильной экспрессией трансгена [6].

На первых этапах контролируемую интеграцию трансгенов проводили с использованием сайт-специфических рекомбиназ, включая системы Cre/loxP и Flp/FRT и интегразу phiC31/R4 [7−9]. Недостаток этих систем заключался в необходимости предварительного создания клеточной линии со вставкой сайта рекомбинации в случайное или ограниченное количество специфических геномных областей клетки.

Появление технологий направленного редактирования генома с применением программируемых нуклеаз предоставило возможность осуществить эффективную и прицельную генетическую сайт-направленную модификацию интересующих мишеней высокоспецифическими нуклеазами. Первым инструментом, используемым для коррекции генома клеток, стала эндонуклеаза, содержащая в своем составе последовательности типа «цинковых пальцев», одна из которых разрезает ДНК, а вторая ― связывает. Позже фундаментальные исследования генома прокариот привели к созданию новых инструментов редактирования: TALEN (Transcription Activator Like Effector Nucleases) и CRISPR/CAS9 (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats). Обе системы отличаются относительной простотой конструирования. Однако белки TALEN достаточно сложно доставлять внутрь клеток. Проблемой также является возможность непреднамеренных разрезов ДНК. Более эффективным инструментом редактирования генома является система CRISPR/Cas. Направляющими структурами CRISPR/Cas системы, узнающими специфические последовательности ДНК, являются короткие РНК, а к каталитически неактивному мутантному белку Cas9 присоединяют белки, активирующие или подавляющие функции промоторов, управляющих работой генов. Связывание такого комплекса с целевой ДНК может приводить к стимуляции или подавлению работы целевого гена. Применение CRISPR/Cas системы позволяет получить сайт-специфические разрывы двухцепочечной ДНК, которые могут быть восстановлены путем негомологичной или гомологичной рекомбинации. Гомологичная рекомбинация позволяет осуществлять целевые интеграции с помощью сконструированных нуклеаз в клетки СНО.

Одной из проблем редактирования клеток яичника китайского хомячка является правильный выбор стратегии, который подразумевает четкое представление о функционировании отдельных структурных единиц гена и белков. Прорыв при выборе стратегии редактирования клеток яичника китайского хомячка с целью увеличения их продуктивности при производстве рекомбинантных белков наметился с развитием омиксных технологий, основанных на достижениях геномики, транскриптомики, протеомики и метаболомики (табл.).

 

Таблица. Геномное редактирование клеточных линий ― продуцентов моноклональных антител

Геномное редактирование	Метод генетического редактирования	Целевые сайты генетического редактирования	Ээффекты генетического редактирования	Линия клеток	Cсылка
Геномное редактирование, направленное на модификацию функциональной активности клеток-продуцентов МКА
Нокаутирование гена Dnmt3a	CRISPR/Cas9	Dnmt3a	Улучшение стабильности экспрессии трансгена в рекомбинантных клетках СНО	CHO‐K1	Jia и соавт., 2018 [10]
Встраивание гена, кодирующего синтез протеиндисульфидизомеразы (PDI)	Трансфекция	Ген PDI	Увеличение синтеза иммуноглобулинов	CHO2F5 MCB	Borth и соавт., 2005 [11]
Оверэкспрессия РНК-связывающего протеина холодового стресса	Трансфекция	Гены «холодового стресса»	Стабилизация транскриптов генов, участвующих в выживании клеток	CHO	Tan и соавт., 2008 [12]
Оверэкспрессия гена, кодирующего глутаминсинтетазу (GS)	Трансфекция	Ген глутаминсинтетазы (GS)	Возможность клеткам расти в среде без глютамина, что значительно снижает накопление аммония в среде	CHO, NS0	Zhang и соавт., 2016 [13]
Овреэкспрессия пируваткарбоксилазы	Трансфекция	Ген пируваткарбоксилазы	Снижение накопления молочной кислоты	CHO	Toussaint и соавт., 2016 [14]
Ингибирование лактатдегидрогеназы А (LDH-A)	Редактирование РНК с использованием малых интерферирующих РНК	Гены лактатдегидрогеназы и пируватдегидрогеназы	Снижение накопления молочной кислоты	CHO	Zhou и соавт., 2011 [15]
Увеличение длительности G1-фазы клеток-продуцентов	Трансфекция	Ген p21cip1	Увеличение синтеза антител IgG4	NS0 6A1/4–9F	Ibarra и соавт., 2003 [16]
Усиление экспрессии антиапоптотических генов	Трансфекция	Mcl-1, Bcl-xL	Увеличение уровня синтеза антител	-	Kunert и соавт., 2016 [17]
Интеграция гена сурвивин (baculoviral inhibitor of apoptosis repeat-containing 5, BIRC5) ― ингибитора апоптоза	CRISPR-Cas9, редактирование	eGFP-HsQSOX1b и Survivin	Увеличение жизнеспособности клеток-продуцентов в 6,40 раз и выхода конечного продукта ― в 5,55 раз	CHO-K1	Wang и соавт., 2018 [6]
Увеличение экспрессии гена, кодирующего синтез протеиндисульфидизомеразы, катализирующего формирование дисульфидных связей	Трансфекция	BiP (HSPA5), циклофилин B (PPIB), и PDI (P4HB)	Увеличение продукции МКА	СНО	Pybus и соавт., 2014 [18]
Гиперэкспрессия микро-РНК	Трансфекция	cgr-miR-17, cgr-miR-221, cgr-miR-21 и cgr-miR-210	Усиление роста клеток и конечного выхода продукта	СНО	Jadhav и соавт., 2012 [19]
Гиперэкспрессия микро-РНК	Трансфекция	Dicer, Drosha and Dgcr8	Усиление пролиферации клеток	СНО	Hackl и соавт., 2014 [20]
Гиперэкспрессия микро-РНК	Трансфекция	miR-466h-5p	Модулирование устойчивости клеток к апоптозу	СНО	Druz и соавт., 2012 [21]
Геномное редактирование, направленное на модификацию МКА
Нокаутирование гена, кодирующего фукозилтрансферазу	CRISPR/Cas9 редактирование	FUT8	Получение нефукозилированных антител	СНО	Chung и соавт., 2012 [22]
Получение сайт-направленных инделов	CRISPR/Cas9 редактирование, биоинформатика	COSMC, FUT8	Получение нефукозилированных антител	СНО	Ronda и соавт., 2014 [23]
Получение запрограммированных гликоформ IgG	CRISPR/Cas редактирование, белковая инженерия Fc области IgG	ST3GAL4, ST3GAL6, FUT8	Получение высокогалактозилированных и афуколизированных гликоформ IgG	СНО	Chung и соавт., 2017 [24]

Примечание. МКА ― моноклональные антитела.

 

Геномное редактирование, направленное на оптимизацию пролиферации и жизнеспособность клеток-продуцентов

Повышение уровня синтеза и стабильности экспрессии рекомбинантных белков в клетках яичника китайского хомячка может быть достигнуто за счет эпигенетической регуляции, в частности частичной инактивации экспрессии гена с помощью метилирования ДНК. Механизмы, лежащие в основе субклональных гетерогенных паттернов экспрессии и нестабильности продукта до конца неясны. Одной из возможных причин снижения экспрессии трансгена может быть снижение копий генов, что приводит к уменьшению транскриптов, вплоть до транскрипционного молчания [25]. Для получения высокого выхода рекомбинантных белков в клетках яичника китайского хомячка обычно используют вектор, содержащий промотор цитомегаловируса человека (cytomegalovirus CMV), который хотя и является сильным промотором, но склонен к транскрипционному молчанию, что приводит к снижению продуктивности клеток яичника китайского хомячка при их длительном культивировании [26]. Эти проблемы могут быть преодолены путем применения эпигенетической регуляции экспрессии генов, в частности за счет снижения уровня метилирования промотора цитомегаловируса человека. Метилирование ДНК катализируется ДНК-метилтрансферазами, запускающими Dnmt3a и Dnmt3b и поддерживающими метилирование Dnmt1. Применение технологии CRISPR/Cas9 позволило с высокой эффективностью провести геномное редактирование СНО-клеток и получить сайт-направленную модификацию гена Dnmt3a. В результате в Dnmt3a-дефицитной клеточной линии яичника китайского хомячка была зафиксирована стабильная и более длительная экспрессия трансгена под контролем промотора цитомегаловируса человека в течение более 60 пассажей [10].

Метаболическая инженерия клеток яичника китайского хомячка

Вначале генетические модификации для повышения уровня синтеза белков клетками-продуцентами проводили без учета метаболических путей. В 1990-х годах появилась новая технология, которая получила название «метаболическая инженерия». Метаболическая инженерия изучает в том числе специфические особенности метаболизма клеток и на основе этих данных помогает создать стратегию модификации клетки с направленно измененными метаболическими превращениями субстратов в целевые продукты.

Метаболизм клеток яичника китайского хомячка характеризуется высоким уровнем потребления глюкозы и глютамина, что приводит к накоплению лактата и аммиака соответственно как основных продуктов их метаболизма. Накопление лактата и аммиака в клеточных культуральных средах приводит к изменению pH и осмолярности, что ингибирует рост и продуктивность клеточной культуры яичника китайского хомячка.

В связи с этим прежде всего необходимо контролировать содержание лактата в среде, не снижая при этом концентрацию клеточной культуры. С этой целью модифицировали технологический процесс культивирования клеток, включая замену питательных веществ: например, глюкозу ― галактозой или пируватом, глутамин ― аспарагином или глутаматом [11]. Обычно замена питательных веществ позволяла уменьшить накопление продуктов распада в среде, однако при этом наблюдалось замедление роста клеток-продуцентов и за счет этого снижение выхода конечного продукта. Применение методов метаболической инженерии позволяет изменить активность ферментов, участвующих в метаболическом пути, и в результате снизить накопление токсических веществ.

При снижении температуры культивирования способность клеток яичника китайского хомячка синтезировать белки повышается, что обусловлено замедлением их роста, увеличением времени их жизни и увеличением их размеров. При низкотемпературном стрессе изменяется экспрессия генов и запускается синтез новых белков: например, происходит оверэкспрессия РНК-связывающего протеина холодового стресса. Стабильная оверэкспрессия РНК-связывающего протеина холодового стресса способствует увеличению синтеза целевого продукта клетками СНО [12]. Индуцируемый холодом микроРНК-связывающий белок выполняет защитную роль в реакции генотоксического стресса за счет стабилизации транскриптов генов, участвующих в выживании клеток, активации процесса трансляции, а также имеет существенное значение в подавлении пролиферации клеток. Таким образом, это одна из технологий метаболической генной инженерии, которая направлена на увеличение экспрессии подобных стрессовых белков.

Другой подход метаболической инженерии клеток яичника китайского хомячка направлен на снижение уровня продуктов метаболизма, которые в конечном итоге приводят к снижению синтеза продукта. Например, оверэкспрессия гена, кодирующего глутамин синтетазу (GS) в клетках яичника китайского хомячка, дает возможность клеткам расти в среде без глютамина, что значительно снижает накопление аммония в среде [13]. Оверэкспрессия некоторых ферментов азотного цикла может способствовать снижению накопления продуктов аммония в культуральной среде. Генетические модификации, направленные на снижение накопления молочной кислоты за счет овреэкспрессии пируваткарбоксилазы [14] или ингибирования лактатдегидрогеназы А (LDH-A) [15], также позволяют увеличить выход конечного продукта в клеточной культуре яичника китайского хомячка.

Регулирование клеточного цикла

Одним из подходов повышения продукции антител клетками яичника китайского хомячка является увеличение длительности клеточного цикла в G0/G1-фазе. N. Ibarra и соавт. (2003) [16] показали увеличение длительности G1-фазы миеломной клеточной линии NS0 6A1/4–9F при индуцибельной экспрессии p21^cip1, что приводило к увеличению синтеза антител IgG4. Для индукции экспрессии факторов, регулирующих клеточный цикл (p27^KIP1 и p21^cip1), также предлагалось использовать рапамицин, который снижает скорость смены клеточного цикла клетками. Остановка в фазе G0/G1 клеточного цикла была достигнута также при ингибировании циклинзависимой киназы или оверэкспрессии ее ингибитора. Благодаря селективному ингибированию циклином CDK 4/6 отмечалось увеличение синтеза специфического продукта в 2−3 раза [27].

Регуляция апоптоза

При стрессовых ситуациях, вызванных изменением рН, недостатком питательных веществ, высокой плотностью клеточной культуры и т.п., запускаются реакции апоптоза, приводящие к гибели клетки. Блокирование реакций запуска апоптоза способствует увеличению времени культивирования клеток и, соответственно, повышению продуктивности клеточной культуры. Существует несколько подходов для увеличения продолжительности жизни клеток, включая увеличение экспрессии антиапоптотических сигналов и делецию проапоптотических генов.

За счет усиления экспрессии антиапоптотических генов (Mcl-1, 30Kc6, Bcl-2, Bcl-w, Bcl-xL, Aven, E1B-19K) и супрессии проапоптотических генов (Bax, Bok, Bak) в клетках млекопитающих отмечалось увеличение уровня синтеза белков, в том числе антител [17]. После трансфекции гена Bcl-xL продуктивность клеток яичника китайского хомячка возрастала на 82 %, а после трансфекции гена Mcl-1 ― на 34 % [28]. Снижение апоптоза в клеточной культуре удалось достигнуть за счет ингибирования каспаз, запускающих реакции апоптоза [17].

С использованием технологии CRISPR-Cas9 для повышения производительности биосинтеза целевого продукта в клетки CHO-K1 был интегрирован ген сурвивин, или, как его еще называют, BIRC5 (baculoviral inhibitor of apoptosis repeat-containing 5), являющийся ингибитором апоптоза. В результате жизнеспособность отредактированных клеток CHO-K1 была увеличена в 6,40 раз, а выход конечного продукта ― в 5,55 раз [6].

Специфические микро-РНК: посттрансляционные модификации

Трансляция

Регуляция синтеза белков на стадии трансляции более энергозатратна, чем регуляция на уровне транскрипции, но способна быстро реагировать на изменения потребности клетки в белках. Регуляция трансляции белка осуществляется через регуляцию ее инициации тремя основными способами:

1) позитивной регуляцией синтеза за счет сродства микроРНК к рибосомам и факторам инициации трансляции;

2) трансляционной репрессией на основании негативной регуляции с помощью белков или микро-РНК, находящихся в составе белковых комплексов;

3) тотальной регуляцией трансляции всей совокупности микроРНК клетки, происходящей при изменении активности факторов инициации трансляции (например, через инактивацию фактора eIF2).

Было выявлено, что у эффективных продуцентов рекомбинантных белков ― клеток линии яичника китайского хомячка ― уровни микроРНК рекомбинантного продукта в клетке не коррелируют с количеством секретируемого белка. Это позволило предположить важность роли трансляционных и/или посттрансляционных событий в клетке [29].

МикроРНК. Одним из подходов метаболической инженерии для увеличения выхода рекомбинантного белка клетками яичника китайского хомячка является сверхэкспрессия специфических микроРНК. МикроРНК являются эволюционно консервативными малыми некодирующими РНК (нРНК), которые посттранскрипционно модулируют экспрессию генов в эукариотических клетках. Они функционируют как молекулы немедленного ответа на внешние стимулы, и отдельные микроРНК могут одновременно регулировать множество различных генов путем несовершенного связывания со специфическими сайтами-мишенями на РНК-мессенджере [29].

Некодирующие РНК дают возможность регулировать целые сигнальные сети, потому что одна микроРНК может посттранскрипционно подавлять экспрессию до ста различных мишеней микроРНК [30, 31]. В последние годы был описан еще один класс малых РНК ― так называемые неканонические микроРНК (нкРНК), которые, по некоторым данным [32, 33], функционируют подобно микроРНК. Эти РНК могут быть получены из некодирующих РНК «домашнего хозяйства», включая рибосомную РНК (рРНК) или транспортную РНК (тРНК). Интересно, что неканонические микроРНК могут также происходить из митохондриальных нкРНК млекопитающих и называются кодированными митохондриальными геномами малыми РНК (митохРНК) [34, 35].

Часто для увеличения продукции различных рекомбинантных белков в системе экспрессии млекопитающих применяют двухфазное культивирование со снижением температуры в конце фазы экспоненциального роста клеточной культуры. Анализ транскриптома позволил выявить изменения профиля микроРНК при различных условиях температуры культивирования, системы культивирования и культуральных сред [36] для разных линий клеток яичника китайского хомячка, характеризующихся разными темпами роста и уровнями продуктивности [37, 38]. Была показана корреляция между отдельными транскриптами микроРНК и уровнем пролиферации клеток [39] или стрессовой реакцией клетки [21]. Выявлена важность регуляции созревания микроРНК на разных стадиях пролиферации клеток яичника китайского хомячка. В цитоплазме премикроРНК разрезается ферментом Dicer, содержащим каталитический центр РНКазы III. Уровни микроРНК и белка Dicer положительно коррелируют со скоростью роста клетки во время экспоненциальной фазы. Переход в стационарную фазу клеточного роста сопровождается подавлением активности Dicer [20]. В работах ряда исследователей показано, что микроРНК можно использовать для улучшения роста клеток яичника китайского хомячка [19], модулирования их устойчивости к апоптозу [21] и специфической продуктивности [19].

Транскриптом клеток яичника китайского хомячка включает сотни микроРНК. Для скрининга микроРНК и выявления влияния их сверхэкспрессии на повышение продуктивности клеток яичника китайского хомячка был предложен подход, включающий клонирование микроРНК в небольшие шпилечные векторы, включая кассету GFP, и их трансфекцию с дальнейшим анализом роста клеток СНО в течение 4 дней. Выбор функционально значимых микроРНК проводится на основании сравнительного анализа фенотипа клеток яичника китайского хомячка, включающего рост, жизнеспособность и продуктивность. На основании данного подхода в качестве потенциального кандидата для сверхэкспрессии в клетки яичника китайского хомячка был выбран miR-17 [19].

МикроРНК Mmu-miR-466h-5p играет проапоптотическую роль в клетках яичника китайского хомячка за счет снижения экспрессии нескольких антиапоптотических генов. Стабильное ингибирование mmu-miR-466h-5p в сконструированной линии клеток яичника китайского хомячка приводило к поздней активации каспазы-3/7 (более чем на 35 ч), культивируемой в условиях инициации апоптоза, а также повышению уровней антиапоптотических генов-мишеней (smo, stat5a, dad1, birc6 и bcl2l2) в 2,1–12,5 раза по сравнению с отрицательным контролем клеток яичника китайского хомячка. Специфическая продуктивность клеток яичника китайского хомячка со сверхэкспрессией mmu-miR-466h-5p увеличилась на 11 % [21].

Клетки яичника китайского хомячка, стабильно экспрессирующие микро-РНК miR-17, демонстрировали как улучшенные характеристики роста, так и удвоенную удельную продуктивность [19].

Длинные некодирующие РНК (нРНК-lncRNAs) представляют собой транскрипты длиной более 200 нуклеотидов, которые лишены значительной открытой рамки считывания (ORF). Обычно нРНК транскрибируются РНК-полимеразой II и сплайсируются с полиаденилированием или без него. Ряд молекул нРНК играет ключевые регуляторные роли в различных биологических процессах, включая эпигенетическую регуляцию [40], контроль транскрипции, [41], сплайсинга [42] и трансляцию микроРНК [43]. нРНК способны модулировать широкий спектр клеточных процессов и механизмов как в ядре, так и в цитоплазме [44]. В клетке нРНК выступают в качестве конкурирующих эндогенных РНК (competing endogenous, ceRNAs), связываясь и изолируя микроРНК [45], действуя как архитектурные РНК (arcRNAs), посредством чего они образуют функциональные структуры [46], повышающие экспрессию генов, или в виде трансбелковых связывающих молекул РНК, которые могут рекрутировать хроматин-модификатор [47]. нРНК могут выступать в качестве предшественников микроРНК, модуляторов стабильности микроРНК, и влиять на посттрансляционные модификации [48].

Несмотря на важность нРНК в контроле клеточных процессов, лишь в последние два-три года появились исследования, показывающие влияние экспрессии нРНК на эффективность синтеза рекомбинантного белка клетками яичника китайского хомячка [49, 50]. Одной из причин небольшого количества исследований нРНК в клетках яичника китайского хомячка является отсутствие данных об их некодирующих транскриптах. Это затрудняет идентификацию целевых нРНК для клеточной инженерии. Решением этой проблемы может стать сходство между геномом китайского хомяка и мыши [51, 52], для клеток которой количество известных некодирующих транскриптов намного выше. В частности, такой подход использовался для идентификации 416 нРНК на основе секвенированных транскриптов из объединенного образца клеток яичника китайского хомячка в сравнении с базой данных fRNAdb некодирующих РНК с использованием BLAST [51]. В 2018 г. вышла работа D. Vito с соавт. [48], которые проанализировали и сравнили между собой кодирующие и некодирующие транскриптомы клеток яичника китайского хомячка, культивируемых при различных условиях и в разные периоды их жизнедеятельности. На основании проведенного анализа были идентифицированы потенциальные мишени нРНК в клетках яичника китайского хомячка для дальнейших манипуляций с целью увеличения их пролиферативной активности и жизнеспособности [48].

Геномное редактирование, направленное на модификацию моноклональных антител, синтезируемых клетками-продуцентами

Инженерия шаперонов

Ключевую роль в фолдинге МКА, синтезируемых в клеточных линиях, играют шапероны, поэтому одним из подходов, направленных на увеличение синтеза рекомбинантных белков СНО-клетками, заключается в регуляции функциональной активности шаперонов. Например, увеличение экспрессии гена, кодирующего синтез протеиндисульфидизомеразы (PID), фермента, катализирующего формирование дисульфидных связей, усиливало синтез МКА клетками яичника китайского хомячка [18]. При модификации активности шаперонов важно выбрать правильную мишень: в частности, усиление экспрессии связывающего протеина, способствующего фолдированию секретируемых белков, отдельно или совместно с оверэкспрессией дисульфидизомеразы, снижало эффективность синтеза МКА клетками яичника китайского хомячка [18].

Гликозилирование антител

Иммуноглобулины человека относятся к гликопротеинам. Как все гликопротеины, иммуноглобулины подвергаются гликозилированию в эндоплазматическом ретикулуме и аппарате Гольджи. N-гликановая структура антител играет ключевую роль в проявлении их биологической активности. Общий механизм терапевтических антител связан с проявлением антителзависимой клеточной цитотоксичности и комплементзависимой цитотоксичности. Любые изменения N-гликановой структуры антител могут ингибировать механизмы действия антител.

Степень гликозилирования зависит от класса иммуноглобулина. Минимальное количество гликанов содержится в иммуноглобулинах класса G (около 3 %), больше — в IgA (около 7,5 %), больше всего — в IgD, IgM, IgE (12 %). N-связанные гликаны содержатся в Fc- и в Fab-фрагментах иммуноглобулинов; О-гликаны обнаружены только в шарнирной области IgD, IgA и IgG3 [53].

Несмотря на использование в качестве системы экспрессии для производства терапевтических моноклональных антител клеток млекопитающих (клетки яичника китайского хомячка или Sp/0), в которых также происходит гликозилирование белков, выявлена разница в особенностях гликозилирования антител человека и рекомбинантных иммуноглобулинов человека. Это обусловлено существующими отличиями между внутриклеточными факторами гликозилирования, включая нуклеотидные производные сахаров, гликозидаз, синтетаз и гликозилтрансфераз, а также различиями в пуле белков-транспортеров нуклеотидных производных сахаров.

Фукозилирование антител

Клетки яичника китайского хомячка характеризуются низким уровнем разрезания N-ацетилглюкозамина и высоким уровнем корового фукозилирования. Оверэкспрессия N-ацетилглюкозаминил трансферазы III (GnT-III) способствует увеличению активности разрезания N-ацетилглюкозамина, что приводит к повышению антителзависимой клеточной цитотоксичности [54]. Снижение или элиминация фукозы в моноклональных антителах также способствует увеличению антителзависимой клеточной цитотоксичности. Нокаутирование гена, кодирующего фукозилтрансферазу (FUT 8) в клетках яичника китайского хомячка, приводит к получению нефукозилированных антител [22]. Применение технологии CRISPR/Cas9 позволило получить инделы с частотой от 13,6 до 47,3 % в пуле трансфицированных клеток с эффективностью трансфекции приблизительно 60 % [23]. Для сравнения, частота генетических нарушений в клетках яичника китайского хомячка с использованием «цинковых пальцев» составила 3,8 и 6,3 % для Bak и Bax соответственно [55].

Галактозилирование

Концевая галактоза Asn297 гликана принимает участие в связывании Fc-фрагмента с FcγRIIIA. Гликан в Asn297 каждого константного домена тяжелой цепи IgG играет критическую роль во взаимодействии антитела с Fc-рецептором. Структура гликана в Fc-фрагменте антитела влияет на индукцию антителозависимой клеточной цитотоксичности.

Для редактирования клеток яичника китайского хомячка с целью получения высокоэффективных терапевтических антител была предложена платформа, объединяющая геномную и белковую инженерию. Для получения гипергалактозилированной гликоформы IgG в клетках яичника китайского хомячка применялось комбинированное редактирование с использованием системы CRISPR/Cas и методов белковой инженерии (модуляция Fc-фрагмента IgG за счет мутаций аминокислотных остатков). В результате были получены антитела, содержащие высокогалактозилированные и афуколизированных гликоформы [24].

Сиалирование

Это присоединение сиаловой кислоты к гликанам. Для клеток яичника китайского хомячка характерен повышенный уровень сиалирования гликопротеинов (около 31 %) по сравнению с гликопротеинами человека: уровень сиалирования IgG1 плазмы крови здорового человека составляет от 2 до 5 % [56]. Сравнительные исследования показали, что в клетках человека синтезируется как α2,3-, так и α2,6-сиалилтрансфераза, а в клетках яичника китайского хомячка α2,6-сиалилтрансфераза не образуется. Следовательно, терминальное сиалирование в клетках яичника китайского хомячка происходит исключительно через α2,3-связь. В результате синтезированные IgG в клетках яичника китайского хомячка характеризуются снижением аффинитета Fc-фрагмента.

Антитела с усиленным сиалированием α-2,6 характеризуются повышенной антителозависимой клеточной цитотоксичностью. Более того, при внутривенном введении иммуноглобулина, сиалированного по гликану, в Fc-части отмечается усиление его противовоспалительных свойств [57].

Получение антител с α-2,6 сиалированием в системе яичника китайского хомячка является сложной задачей из-за недоступности сиалилтрансферазы для сайта N-гликана тяжелой цепи и присутствия исключительно α-2,3 сиалилтрансфераз. Для выполнения этой задачи вначале с использованием CRISPR/Cas9 были удалены гены ST3GAL4 и ST3GAL6 для минимизации сиалирования α-2,3, а затем получены клетки яичника китайского хомячка, сверхэкспрессирующие α-2,6-сиалилтрансферазу, что позволило получить IgG с повышенным уровнем α-2,6-сиалирования [24].

Иммуногенность

В отличие от нативных человеческих антител, IgG, являющиеся продуктом клеток яичника китайского хомячка, содержат чужеродные для человека галактоза-α1,3-галактозу (α-Gal) и N-гликолилнейраминовую кислоту (Neu5Gc), расположенные в терминальной части гликана. Подобные иммуноглобулины являются иммуногенными для человека. Для снижения иммуногенности синтезируемых МКА гены, кодирующие синтез α-Gal и Neu5Gc, нокаутируют или модифицируют.

Проблемы стабилизации препаратов моноклональных антител

Терапия моноклональными антителами подразумевает инъекции в небольших объемах, но с высокой концентрацией антител, иногда превышающих 100 мг/мл. Это приводит к значительным проблемам, связанным с сохранением стабильности препарата, образованием обратимых нековалентных белковых агрегатов, что приводит к повышенной вязкости препарата. Для стабилизации препаратов с высокой концентрацией моноклональных антител добавляют вспомогательные вещества, например сахара. Однако чрезмерное использование эксципиентов может приводить к токсичности высококонцентрированных составов моноклональных антител.

Терапевтическая эффективность моноклональных антител тесно связана с их структурной, конформационной и химической стабильностью. Наиболее распространенные причины физической нестабильности возникают при нарушении температурного режима хранения, механических нагрузках. Химическая деградация, включающая дезамидирование, окисление, изомеризацию, гидролиз пептидной связи, фрагментацию и сшивание, также влияет на первичную последовательность моноклональных антител, что может привести к значительным изменениям в их структуре и, соответственно, потере функции.

Для стабилизации моноклональных антител оптимизируют кислотность препаратов, используя эффективные буферные компоненты, поверхностно-активные вещества, а также сахара и полиолы, выполняющие антиоксидантные, хелаторные и/или криопротекторные функции.

Заключение

Применение препаратов на основе моноклональных антител является одной из наиболее активно развивающихся областей в современной терапии онкологических, вирусных, бактериальных и аутоиммунных заболеваний. Это обусловлено высокой специфичностью терапевтических моноклональных антител, которые обеспечивают адресную направленность эффектов. Но даже несмотря на внедрение технологий, позволяющих получать полностью человеческие моноклональные антитела, все еще остаются проблемы, обусловленные возможным проявлением иммуногенности препаратов. Приведенные в статье данные свидетельствуют о том, что большое влияние на иммуногенность препарата оказывают особенности процессов посттрансляционной модификации моноклональных антител в клетках-продуцентах. На примере клеточной линии яичника китайского хомячка, наиболее часто используемой для получения терапевтических моноклональных антител, было показано, что использование современных инструментов и подходов к геномному редактированию клеток-продуцентов позволяет повысить уровень и стабильность синтеза моноклональных антител, а также снизить их иммуногенность. Эффективность модификации клеток-продуцентов увеличивается при разработке стратегии их редактирования с учетом данных метаболической инженерии, а также благодаря применению и развитию современных инструментов генетического редактирования CRISPR/Cas9.

Дополнительная информация

Источник финансирования. Работа выполнена в рамках Соглашения № 075-15-2019-1671 от 31 октября 2019 г. с Минобрнауки России (задача 2.8 Разработка рекомбинантных человеческих моноклональных антител для лечения заболеваний, вызванных патогенными микроорганизмами, бактериальными и растительными токсинами).

Конфликт интересов. Авторы данной статьи подтвердили отсутствие конфликта интересов, о котором необходимо сообщить.

Участие авторов. Все авторы внесли существенный вклад в проведение поисково-аналитической работы и подготовку статьи, прочли и одобрили финальную версию до публикации.

 

Об авторах

Виктория Валерьевна Фирстова

Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии

Автор, ответственный за переписку.
Email: victoria1@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-9898-9894
SPIN-код: 9166-9151

д.б.н.

Россия, 142279, Московская область, п.Оболенск

Игорь Георгиевич Шемякин

Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии

Email: shemyakin@obolensk.org
ORCID iD: 0000-0001-9667-1674
SPIN-код: 3180-1459

д.м.н., профессор

Россия, 142279, Московская область, п.Оболенск

Иван Алексеевич Дятлов

Государственный научный центр прикладной микробиологии и биотехнологии

Email: dyatlov@obolensk.org
ORCID iD: 0000-0003-1078-4585
SPIN-код: 6567-8380

д.м.н., профессор, академик РАН

Россия, 142279, Московская область, п.Оболенск

Список литературы

Дополнительные файлы