<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Annals of the Russian academy of medical sciences</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Annals of the Russian academy of medical sciences</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Вестник Российской академии медицинских наук</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">0869-6047</issn><issn publication-format="electronic">2414-3545</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">"Paediatrician" Publishers LLC</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">882</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.15690/vramn882</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>CELL TRANSPLANTOLOGY AND TISSUE ENGINEERING: CURRENT ISSUES</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>АКТУАЛЬНЫЕ ВОПРОСЫ КЛЕТОЧНОЙ ТРАНСПЛАНТОЛОГИИ И ТКАНЕВОЙ ИНЖЕНЕРИИ</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">STEM/PROGENITOR CELLS ADHESION STRENGTHENING TO SYNTHETIC MATERIAL USING EXTRACELLULAR MATRIX</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>УСИЛЕНИЕ АДГЕЗИИ СТВОЛОВЫХ ПРОГЕНИТОРНЫХ КЛЕТОК К СИНТЕТИЧЕСКИМ МАТЕРИАЛАМ ВНЕКЛЕТОЧНЫМ МАТРИКСОМ</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0003-4897-8676</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Lykov</surname><given-names>A. P.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Лыков</surname><given-names>Александр Петрович</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Novosibirsk</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Кандидат медицинских наук, ведущий научный сотрудник лаборатории клеточных технологий НИИКЭЛ ― филиал ИЦиГ СО РАН, старший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий Центра новых технологий «НМИЦ им. акад. Е.Н. Мешалкина» МР.</p><p>630060, Новосибирск, ул. Тимакова, д. 2, тел.: +7 (383) 335-93-32.</p><p>SPIN-код: 4883-0887</p></bio><email>aplykov2@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-9956-0056</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Poveshchenko</surname><given-names>O. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Повещенко</surname><given-names>Ольга Владимировна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Novosibirsk</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Доктор медицинских наук, заведующая лабораторией клеточных технологий НИИКЭЛ ― филиал ИЦиГ СО РАН, заведующая лабораторией клеточных технологий Центра новых технологий «НМИЦ им. акад. Е.Н. Мешалкина» МР. </p><p>630060, Новосибирск, ул. Тимакова, д. 2, тел.: +7 (383) 335-93-32.</p><p>SPIN-код: 1451-4467</p></bio><email>poveshchenkoov@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-8443-656X</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Bondarenko</surname><given-names>A. N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Бондаренко</surname><given-names>Наталья Анатольевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Novosibirsk</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Кандидат биологических наук, научный сотрудник лаборатории клеточных технологий НИИКЭЛ ― филиал ИЦиГ СО РАН, старший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий Центра новых технологий «НМИЦ им. акад. Е.Н. Мешалкина» МР.</p><p>630060, Новосибирск, ул. Тимакова, д. 2, тел.: +7 (383) 335-93-32.</p><p>SPIN-код: 5722-7157</p></bio><email>bond80288@yandex.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-4752-988X</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Surovtseva</surname><given-names>M. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Суровцева</surname><given-names>Мария Александровна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Novosibirsk</p></bio><bio xml:lang="ru"><p/><p>Кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий НИИКЭЛ ― филиал ИЦиГ СО РАН, старший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий Центра новых технологий «НМИЦ им. акад. Е.Н. Мешалкина» МР</p><p>630060, Новосибирск, ул. Тимакова, д. 2, тел.: +7 (383) 335-93-32.</p>SPIN-код: 5597-4170</bio><email>mfelde@ngs.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><contrib-id contrib-id-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-7380-2763</contrib-id><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Kim</surname><given-names>I. I.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Ким</surname><given-names>Ирина Иннокентьевна</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Novosibirsk</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>Кандидат медицинских наук, научный сотрудник лаборатории клеточных технологий НИИКЭЛ ― филиал ИЦиГ СО РАН, младший научный сотрудник лаборатории клеточных технологий Центра новых технологий «НМИЦ им. акад. Е.Н. Мешалкина» МР.</p><p>630060, Новосибирск, ул. Тимакова, д. 2, тел.: +7 (383) 335-93-32.</p><p>SPIN-код: 2887-2812</p></bio><email>kii5@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Research Institute of Clinical and Experimental Lymрhology ― Branch of the Institute of Cytology and Genetics, Siberian Branch of Russian Academy of Sciences</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Научно-исследовательский институт клинической и экспериментальной лимфологии ― филиал Института цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">Research Institute of Circulation Pathology</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">Национальный медицинский исследовательский центр имени академика Е.Н. Мешалкина</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2017-11-11" publication-format="electronic"><day>11</day><month>11</month><year>2017</year></pub-date><volume>72</volume><issue>5</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>336</fpage><lpage>345</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2017-08-02"><day>02</day><month>08</month><year>2017</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2017-10-25"><day>25</day><month>10</month><year>2017</year></date></history><permissions><copyright-statement xml:lang="en">Copyright ©; 2017, "Paediatrician" Publishers LLC</copyright-statement><copyright-statement xml:lang="ru">Copyright ©; 2017, Издательство "Педиатръ"</copyright-statement><copyright-year>2017</copyright-year><copyright-holder xml:lang="en">"Paediatrician" Publishers LLC</copyright-holder><copyright-holder xml:lang="ru">Издательство "Педиатръ"</copyright-holder><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" start_date="2018-11-11"/><license><ali:license_ref xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/">https://vestnikramn.spr-journal.ru/jour/about/submissions</ali:license_ref></license></permissions><self-uri xlink:href="https://vestnikramn.spr-journal.ru/jour/article/view/882">https://vestnikramn.spr-journal.ru/jour/article/view/882</self-uri><abstract xml:lang="en"><p><bold>Background:</bold> Tissue-engineered vascular grafts of small diameter have being widely used in coronary artery bypass grafting. However, the rate of settling of these grafts with endothelial cells is insufficient. Aims:</p><p><bold>The aim</bold> of the study was to selucidate the adhesion of endothelial progenitor cells and mesenchymal stem cells to synthetic materials (polystyrol, polytetrafluoroethylene) preprocessed with extracellular matrix (gelatin, fibronectin, collagen) in vitro.</p><p><bold>Materials and methods:</bold> For the study,the endothelial progenitor cells (EPC) were isolated from the peripheral blood of patients with ischemic heart disease, and mesenchymal stem cells (MSC) — from bone marrow of Wistar rats. Commercial monoclonal antibodies for flow- cytometry were used to determine the phenotype of EPC. To isolate the early and late EPC from mononuclear cells of peripheral blood, cells were raised for 8 and 16 days on a gelatin or fibronectin based substrate. The commercial kits for enzyme linked immunoassay were applied to assess levels of cytokine production and nitric oxide by early and late EPC conditioned by gelatin or fibronectin on the 8th and 16th days of growth. To conduct the study the MSC were isolated from bone marrow of rats. To determine the attachment of adherent fraction of nucleated bone marrow cells, cell morphology, the adipogenic and osteogenic differentiation were evaluated. To assess migration of MSC in real time within 24 hours on the device Cell-IQ, we used «closure/wound healing» test. The commercial kits for enzyme linked immunoassay were applied to assess levels of cytokine production and nitric oxide by MSC; and components of the extracellular matrix (fibronectin, collagen I and type IV) ― to assess the increased adhesion of MSC to the polytetrafluoroethylene. </p><p><bold>Results:</bold> The results demonstrated that endothelial progenitor cells adhere to both gelatin and fibronectin and confirmed the influence of these extracellular matrix components on the cytokine levels produced by early and late endothelial cells. The combination of fibronectin with type I or IV collagen or the combination of thereof promotes the adhesion to polytetrafluoroethylene and colonization of the graft.</p><p><bold>Conclusions:</bold> Preprocessing of synthetic material (polystyrene, polytetrafluoroethylene) enhances adhesion and growth of EPC and MSC which can be implemented when creating tissue-engineered vascular grafts for small diameter coronary artery bypass grafting with specified conditions of settlement by the cells involved in neointima formation.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p><bold>Обоснование.</bold> Тканеинженерные сосудистые протезы малого диаметра нашли свое широкое применение при операциях шунтирования. Однако скорость заселения протезов эндотелиоцитами недостаточна.</p><p><bold>Цель исследования</bold> ― изучение адгезии эндотелиальных прогениторных клеток и мезенхимных стволовых клеток к синтетическим материалам (полистерол, политетрафторэтилен), предобработанным внеклеточным матриксом (желатин, фибронектин, коллаген) in vitro.</p><p><bold>Методы.</bold> Для проведения исследования эндотелиальные прогениторные клетки (ЭПК) выделяли из периферической крови больных ишемической болезнью сердца, мезенхимные стволовые клетки (МСК) ― из костного мозга крыс линии Wistar. Для определения фенотипа ЭПК использовали коммерческие моноклональные антитела для проточной цитофлоуметрии. Для получения ранних и поздних ЭПК из мононуклеаров периферической крови клетки растили в течение 8 и 16 сут на подложке из желатина или фибронектина. Для оценки уровней продукции цитокинов и оксида азота ранними и поздними ЭПК на 8-е и 16-е сут роста при кондиционировании с желатином или фибронектином использовали коммерческие наборы для твердофазного иммуноферментного анализа. Для проведения исследования МСК выделяли из костного мозга крыс. Для определения принадлежности прилипшей фракции ядросодержащих клеток костного мозга оценивали морфологию клеток, дифференцировку в адипогенном и остеогенном направлении. Для проведения оценки миграции МСК в режиме реального времени в течение 24 ч на приборе Cell-IQ использовали тест закрытия/заживления раны. Для оценки уровней продукции цитокинов и оксида азота МСК использовали коммерческие наборы для твердофазного иммуноферментного анализа; для оценки усиления адгезии МСК к сосудистым протезам из политетрафторэтилена ― компоненты внеклеточного матрикса (фибронектин, коллаген I и IV типа).</p><p><bold>Результаты.</bold> Показано, что эндотелиальные прогениторные клетки, адгезируют как к желатину, так и к фибронектину, продемонстрировано также влияние данных компонентов внеклеточного матрикса на уровни продукции цитокинов ранними и поздними эндотелиальными клетками. Сочетание фибронектина с коллагеном I или IV типа или их комбинацией способствует адгезии к политетрафторэтилену и заселению графта.</p><p><bold>Заключение.</bold> Предобработка синтетического материала (полистирол, политетрафторэтилен) усиливает адгезию и рост ЭПК и МСК, что может быть использовано для создания тканеинженерных сосудистых протезов малого диаметра для аортокоронарного шунтирования с заданными условиями заселения их клетками, вовлеченными в формирование неоинтимы.</p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>gelatin</kwd><kwd>fibronectin</kwd><kwd>collagen I and IV type</kwd><kwd>stem progenitor cells</kwd><kwd>adhesion</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>желатин</kwd><kwd>фибронектин</kwd><kwd>коллаген I и IV типа</kwd><kwd>стволовые/прогениторные клетки</kwd><kwd>адгезия</kwd></kwd-group><funding-group><funding-statement xml:lang="ru">Российский научный фонд, проект № 17-75-30009</funding-statement></funding-group></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Бокерия Л.А., Пурснов М.Г., Соболев А.В., и др. Анализ результатов интраоперационной шунтографии у 600 больных ишемической болезнью сердца после операции коронарного шунтирования // Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. ― 2016. ― Т. 58. ― №3 ― С. 143–151. [Bockeria LA, Pursanov MG, Sobolev AV, et al. Analysis of the results of intraoperative angiography in 600 patients after coronary artery bypass surgery. Grud Serdechnososudistaia Khir. 2016;58(3):143−151. (In Russ).]</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>Шумков К.В, Лефтерова Н.П., Пак Н.Л., и др. Аортокоронарное шунтирование в условиях искусственного кровообращения и на работающем сердце: сравнительный анализ ближайших и отдаленных результатов и послеоперационных осложнений (нарушения ритма сердца, когнитивные и неврологические расстройства, реологические особенности и состояние системы гемостаза) // Креативная кардиология. ― 2009. ― №1 ― С. 28–50. [Shumkov KV, Lefterova NP, Pak NL, et al. Coronary artery bypass grafting in conditions of artificial blood and a beating heart: a comparative analysis of immediate and long-term results and postoperative complications (arrhythmias, cognitive and neurological disorders, rheological characteristics and hemostasis). Creative cardiology. 2009;(1):28−50. (In Russ).]</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Севостьянова В.В., Головкин А.С., Филипьев Д.Е., и др. Выбор оптимальных параметров электроспиннинга для изготовления сосудистого графта малого диаметра из поликапролактона // Фундаментальные исследования. ― 2014. ― №10–1 ― С. 180–184. [Sevostyanova VV, Golovkin AS, Philipey DE, et al. Optimal parameters of electrospinning for small-diameter polycaprolactone vascular graft fabrication. Fundamental’nye issledovaniya. 2014;(10–1):180−184 (In Russ).]</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Jantzen AE, Lane WO, Gage SM, et al. Autologous endothelial progenitor cell-seeding technology and biocompatibility testing for cardiovascular devices in large animal model. J Vis Exp. 2011;(55): e3197. doi: 10.3791/3197.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>Laube HR, Duwe J, Rutsch W, Konertz W. Clinical experience with autologous endothelial cell-seeded polytetrafluoroethylene coronary artery bypass grafts. J Thorac Cardiovasc Surg. 2000;120(1):134–141. doi: 10.1067/mtc.2000.106327.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Scharner D, Rossig L, Carmona G, et al. Caspase-8 is involved in neovascularization-promoting progenitor cell functions. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009;29(4):571–578. doi: 10.1161/ATVBAHA.108.182006.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>Смагин А.А., Кочеткова М.В., Хабаров Д.В., Повещенко О.В. Методика выделения из периферической крови мобилизированных клеток костного мозга с использованием процедуры цитафереза // Международный журнал экспериментального образования. ― 2013. ― №11–2 ― С. 56–58. [Smagin AA, Kochetkova MV, Khabarov DV, Poveshchenko OV. Method of isolation mobilized bone marrow cells from peripheral blood by the procedure cytapheresis. Mezhdunarodnyi zhurnal eksperimental’nogo obrazovaniya. 2013;(11–2):56−58. (In Russ).]</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Hristov M, Erl W, Weber PC. Endothelial progenitor cells: mobilization, differentiation, and homing. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2003;23(7):1185–1189. doi: 10.1161/01.Atv.0000073832.49290.B5.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>Medina RJ, O’Neill CL, Sweeney M, et al. Molecular analysis of endothelial progenitor cell (EPC) subtypes reveals two distinct cell populations with different identities. BMC Med Genomics. 2010;3:18. doi: 10.1186/1755-8794-3-18.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>Angelos MG, Brown MA, Satterwhite LL, et al. Dynamic adhesion of umbilical cord blood endothelial progenitor cells under laminar shear stress. Biophys J. 2010;99(11):3545–3554. doi: 10.1016/j.bpj.2010.10.004.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>To WS, Midwood KS. Plasma and cellular fibronectin: distinct and independent functions during tissue repair. Fibrogenesis Tissue Repair. 2011;4:21. doi: 10.1186/1755-1536-4-21.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>Hristov M, Zernecke A, Bidzhekov K, et al. Importance of CXC chemokine receptor 2 in the homing of human peripheral blood endothelial progenitor cells to sites of arterial injury. Circ Res. 2007;100(4):590–597. doi: 10.1161/01.RES.0000259043.42571.68.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>Hur J, Yoon CH, Kim HS, et al. Characterization of two types of endothelial progenitor cells and their different contributions to neovasculogenesis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2004;24(2):288–293. doi: 10.1161/01.ATV.0000114236.77009.06.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>Lai Y, Shen Y, Liu XH, et al. Interleukin-8 induces the endothelial cell migration through the activation of phosphoinositide 3-kinase-Rac1/RhoA pathway. Int J Biol Sci. 2011;7(6):782–791.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>Qiao W, Niu LY, Liu Z, et al. Endothelial nitric oxide synthase as a marker for human endothelial progenitor cells. Tohoku J Exp Med. 2010;221(1):19–27. doi: 10.1620/tjem.221.19.</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>Ribatti D, Presta M, Vacca A, et al. Human erythropoietin induces a pro-angiogenic phenotype in cultured endothelial cells and stimulates neovascularization in vivo. Blood. 1999;93(8):2627–2636.</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>Wang QR, Wang BH, Zhu WB, et al. An in vitro study of differentiation of hematopoietic cells to endothelial cells. Bone Marrow Res. 2011;2011:846096. doi: 10.1155/2011/846096.</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>Asahara T, Masuda H, Takahashi T, et al. Bone marrow origin of endothelial progenitor cells responsible for postnatal vasculogenesis in physiological and pathological neovascularization. Circ Res. 1999;85(3):221–228. doi: 10.1161/01.res.85.3.221.</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>Ahrens I, Domeij H, Topcic D, et al. Successful in vitro expansion and differentiation of cord blood derived CD34+ cells into early endothelial progenitor cells reveals highly differential gene expression. PLoS One. 2011;6(8):e23210. doi: 10.1371/journal.pone.0023210.</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>Honold J, Lehmann R, Heeschen C, et al. Effects of granulocyte colony stimulating factor on functional activities of endothelial progenitor cells in patients with chronic ischemic heart disease. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2006;26(10):2238–2243. doi: 10.1161/01.ATV.0000240248.55172.dd.</mixed-citation></ref><ref id="B21"><label>21.</label><mixed-citation>Yamawaki-Ogata A, Fu XM, Hashizume R, et al. Therapeutic potential of bone marrow-derived mesenchymal stem cells in formed aortic aneurysms of a mouse model. Eur J Cardiothorac Surg. 2014;45(5):e156–e165. doi: 10.1093/ejcts/ezu018.</mixed-citation></ref><ref id="B22"><label>22.</label><mixed-citation>Shoji M, Koba S, Kobayashi Y. Roles of bone-marrow-derived cells and inflammatory cytokines in neointimal hyperplasia after vascular injury. Biomed Res Int. 2014;2014:1–8. doi: 10.1155/2014/945127.</mixed-citation></ref><ref id="B23"><label>23.</label><mixed-citation>Rotmans JI. In vivo cell seeding with anti-CD34 antibodies successfully accelerates endothelialization but stimulates intimal hyperplasia in porcine arteriovenous expanded polytetrafluoroethylene grafts. Circulation. 2005;112(1):12–18. doi: 10.1161/circulationaha.104.504407.</mixed-citation></ref><ref id="B24"><label>24.</label><mixed-citation>Larsen CC, Kligman F, Kottke-Marchant K, Marchant RE. The effect of RGD fluorosurfactant polymer modification of ePTFE on endothelial cell adhesion, growth, and function. Biomaterials. 2006;27(28):4846–4855. doi: 10.1016/j.biomaterials.2006.05.009.</mixed-citation></ref><ref id="B25"><label>25.</label><mixed-citation>Dohmen PM, Pruss A, Koch C, et al. Six years of clinical follow-up with endothelial cell–seeded small-diameter vascular grafts during coronary bypass surgery. J Tissue Eng. 2013;4:204173141350477. doi: 10.1177/2041731413504777.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
